Anti-Cathepsin B Rabbit Antibody [F22P14]

目录号:F3378

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生物描述

特异性

Anti-Cathepsin B Rabbit Antibody [F22P14] 用于检测内源性 Cathepsin B 总的蛋白水平。

背景 Cathepsin B是一种溶酶体半胱天冬酶,属于木瓜蛋白酶家族。它最初以339个氨基酸的前酶形式合成,其中包含17个氨基酸的信号肽。该前体经过加工形成成熟酶,分子量为30 kDa,由一个25–26 kDa的重链和一个5 kDa的轻链通过二硫键连接。酶的催化三联体由Cys29、His199和Asp219组成,使其具有内肽酶和肽酰二肽酶活性。一个独特的封闭环(Pro107–Asp124)通过盐桥(His110–Asp22,Arg116–Asp224)稳定酶,并调节其在酸性条件下的羧肽酶活性,而在中性pH时则转向内肽酶活性。在高尔基体中的翻译后糖基化使得猫hepsin B带有甘露糖-6-磷酸,指引其进入溶酶体。进入溶酶体后,酸性pH触发酶的自催化激活。它还表现出连接酶活性,在特定条件下通过反向蛋白水解合成肽。它在凋亡中发挥重要作用,通过切割Bid促进线粒体细胞色素c的释放。Cathepsin B还通过释放从白蛋白降解中得到的半胱氨酸,促进谷胱甘肽的合成,影响铁死亡。病理上,cathepsin B参与癌症转移,通过降解细胞外基质、导致类风湿关节炎中的炎症性关节损伤,并通过激活蛋白水解级联反应(如将前uPA转化为uPA,分解胶原)参与心血管重塑。

使用信息

抗体应用 WB, IHC, IF, FCM 稀释比例
WB IHC IF FCM
1:1000 1:1000 1:250 1:500
反应性 Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit MW 38 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆或置于冰上超声裂解样品,静置30 min。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),超声破碎,冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 60 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data