Anti-IRG1 Rabbit Antibody [L17A13]

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生物描述

特异性

Anti-IRG1 Rabbit Antibody [L17A13] 可检测内源性 IRG1 总蛋白水平。

背景 免疫反应基因1 (IRG1) 是巨噬细胞在促炎条件下上调最显著的基因之一,并且在妊娠子宫着床期间也高表达。IRG1 编码一种顺乌头酸脱羧酶,该酶催化顺乌头酸(三羧酸 (TCA) 循环的中间体)转化为衣康酸。衣康酸作为琥珀酸脱氢酶的内源性抑制剂,从而将巨噬细胞的代谢重编程与炎症调节联系起来。功能上,IRG1 在胚胎着床和神经退行性病变中发挥关键作用。在巨噬细胞中,它通过产生活性氧 (ROS) 来增强 A20 的表达,从而促进内毒素耐受。细胞保护酶血红素加氧酶-1 (HO-1) 可产生内源性一氧化碳 (CO),在脂多糖 (LPS) 诱导的耐受性和交叉耐受性过程中,该酶也在肺中表达,这突显了 IRG1 参与的更广泛的抗炎网络。在早期植入期(以炎症细胞因子分泌水平高为标志),子宫内 IRG1 的表达尤其升高。IRG1 失调与自身免疫性疾病和炎症疾病相关。IRG1 主要定位于线粒体,是免疫和代谢途径之间的关键纽带。值得注意的是,沉默 IRG1 可增加 NF-κB 和 IRF3 的活化,同时降低 A20 的表达和 ROS 的产生,进一步强调了其在炎症中的调节作用。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:30
反应性 Human, Mouse
抗体类型 Rabbit MW 53 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 90s 以上)
 

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