Anti-Phospho-CDK2 (Thr160) Rabbit Antibody [N24F24]

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生物描述

特异性

Anti-Phospho-CDK2 (Thr160) Rabbit Antibody [N24F24] 用于检测当 Thr 160位点磷酸化时内源性 Phospho-CDK2 (Thr 160) 总的蛋白水平。

背景 CDK2(细胞周期蛋白依赖性激酶2)在丝氨酸160位点的磷酸化是其完全激活的关键步骤,使其能够调节细胞周期的进程。Thr160位于CDK2的激活环(AL)中,磷酸化后稳定了激活环,减少其柔性,使底物能够有效地与其结合。此磷酸化通常由CDK激活激酶(CAK)介导,CAK将磷酸基从ATP转移到Thr160。该磷酸化促使与底物上P+3位点的赖氨酸残基形成离子相互作用,促进底物识别并增强CDK2的催化效率。CDK2与细胞周期蛋白(如细胞周期蛋白A和细胞周期蛋白E)形成复合物,Thr160的磷酸化显著提高了其在这些复合物中的酶活性。该酶在活性位点中帮助镁离子(Mg2+)催化磷酸转移反应,并在催化过程中稳定过渡态。Thr160的去磷酸化由磷酸酶(如KAP)介导,除非与细胞周期蛋白结合,否则会抑制CDK2的活性,从而确保其适当的调节。CDK2还可以在特定条件下自磷酸化Thr160,进一步调节其激活。这一磷酸化事件在细胞周期中受到严格调控,在S期和G2期达到高峰,以确保细胞周期的顺利进展。Thr160磷酸化的失调会破坏底物识别和酶活性,从而妨碍细胞周期的正常调控。

使用信息

抗体应用 WB, IHC, IF, ELISA 稀释比例
WB IHC IF
1:2000-1:6000 1:50 - 1:200 1:50 - 1:200
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit MW 34kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆或置于冰上超声裂解样品,静置30 min。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),超声破碎,冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:2000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: C6
    Lane 2: C6 (Nocodazole, 50 ng/ml, 37℃,20 h)