Anti-Phospho-IκBα (Ser32/36) Mouse Antibody [F24N7]

目录号:F0197

打印

生物描述

特异性

Anti-Phospho-IκBα (Ser32/36) Mouse Antibody [F24N7] 仅识别 Ser32/36 处磷酸化的内源性 IκBα 总蛋白水平。

背景 IκB激酶 (IKK) 复合物是激活 NF-κB 通路的中枢信号转导枢纽。该复合物由两个催化亚基 IKKα 和 IKKβ(丝氨酸/苏氨酸激酶)以及一个调节亚基 NEMO(NF-κB 必需调节剂,也称为 IKKγ)组成。IKK 复合物整合了多种激活 NF-κB 的上游信号,导致 IκB 蛋白、NF-κB 亚基和其他细胞靶标发生磷酸化。在未受刺激的细胞中,NF-κB 转录因子通过与抑制性 IκB 蛋白(例如 IκBα、IκBβ 和 IκBε)或前体蛋白 p100 和 p105 结合,在细胞质中维持非活性状态。这些抑制性蛋白阻止 NF-κB 进入细胞核并启动基因转录。受到刺激后,IκB 蛋白会在特定丝氨酸残基(尤其是 IκBα 的 Ser32 和 Ser36 位点)上被激活的 IKK 复合物磷酸化。这种磷酸化标记 IκB,使其能够被 SCFβTrCP E3 泛素连接酶复合物识别,从而导致其泛素化并随后通过蛋白酶体降解。IκB 降解会释放 NF-κB 二聚体,这些二聚体随后转位至细胞核,驱动靶基因的转录。多种外界信号,包括炎症细胞因子、生长因子和趋化因子,均可触发这一级联反应,最终导致 IκBα 磷酸化并激活 NF-κB 依赖性基因表达。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human, Mouse, Rat, Monkey
抗体类型 Mouse MW 40 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 60 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 150s 以上)
 

Application Data