Anti-Phospho-NF-κB p65 (Ser468) Rabbit Antibody [G12A6]

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生物描述

特异性

Anti-Phospho-NF-κB p65 (Ser468) Rabbit Antibody [G12A6] 仅识别 Ser468 处磷酸化的内源性 NF-κB p65 总蛋白水平。

背景 磷酸化NF-κB p65 (Ser468) 是指NF-κB家族p65 (RelA)亚基在其C末端转录激活结构域内丝氨酸468位点的磷酸化。NF-κB家族通过二聚体转录因子复合物调控与免疫、炎症和细胞存活相关的基因。p65包含一个负责DNA结合和二聚化的Rel同源结构域,以及一个介导转录激活的转录激活结构域。Ser468位点的磷酸化在T细胞共刺激过程中由IKKε介导,在基础条件下由GSK-3β介导。这种翻译后修饰促进p65与COMMD1-Cullin2泛素连接酶复合物结合,从而导致染色质结合p65的泛素化和蛋白酶体降解。 Ser468 位点的磷酸化通过促进 p65 从染色质中移除,选择性地终止特定 NF-κB 靶基因(例如 ICAM1)的转录。Ser468 位点突变会破坏这种调控机制,从而稳定 p65 并延长其转录活性。GSK-3β 介导的磷酸化会抑制基础 NF-κB 信号转导,而 IKKε 驱动的磷酸化则会微调对免疫刺激的反应。因此,这种修饰可作为组成型和诱导型调控信号的整合点,从而实现对 NF-κB 活性的精确调控。Ser468 位点磷酸化失调与慢性炎症、自身免疫和肿瘤发生相关。

使用信息

抗体应用 WB, FCM, ELISA 稀释比例
WB
1:2000-1:10000
反应性 Human, Mouse
抗体类型 Rabbit MW 65 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:2000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

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