Anti-Phospho-Tau (Ser202/Thr205) Rabbit Antibody [M2L8]

目录号:F3533

打印

生物描述

特异性

Anti-Phospho-Tau (Ser202/Thr205) Rabbit Antibody [M2L8] 仅识别 Ser202 和 Thr205 处磷酸化的内源性 Tau 总蛋白水平。

背景 磷酸化 Tau (Ser202/Thr205) 是指在丝氨酸 202 和苏氨酸 205 位点被磷酸化的 tau 蛋白,这两个位点位于微管相关蛋白富含脯氨酸的区域内。Tau 是一种本质上无序的蛋白质,能够稳定并促进微管的组装。Ser202/Thr205 位点的磷酸化会诱导构象变化,从而延伸 N 端区域并增加神经突中微管之间的间距。这些位点可被 Cdk5、GSK-3β、PKA 和酪蛋白激酶 II 等激酶磷酸化,其中 Cdk5 优先磷酸化 Thr205 位点,然后再磷酸化 Ser202 位点,磷酸化的顺序受 tau 与微管结合的影响。这些位点的磷酸化调节tau的微管结合亲和力,通常会降低其稳定微管的能力,并导致细胞骨架不稳定。Ser202/Thr205位点的过度磷酸化是神经退行性疾病的关键事件,导致tau聚集和神经原纤维缠结的形成,这是阿尔茨海默病和其他tau蛋白病的特征。这些残基的磷酸化状态也受各种磷酸酶的调节,包括PP2A、PP2B和PP5,它们比PP1更有效地在这些位点对tau进行去磷酸化。这些修饰会改变tau的构象、微管相互作用和细胞定位,并通过损害神经元功能和促进tau病理,在疾病进展中发挥关键作用。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human, Mouse, Rat
抗体类型 Rabbit MW 55-80 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 120s 以上)
 

Application Data