Anti-PKM2 Mouse Antibody [L22N15] Datasheet

生物描述

特异性	Anti-PKM2 Mouse Antibody [L22N15] 用于检测内源性 PKM2 总的蛋白水平。
背景	PKM2（丙酮酸激酶M2）是一种多功能的糖酵解酶，由PKM基因编码，主要在癌细胞、胚胎组织和增殖细胞中表达。它催化糖酵解的最后一步，将磷酸烯醇丙酮酸（PEP）转化为丙酮酸，存在两种形式：一种是四聚体高活性形式，推动糖酵解；另一种是二聚体低活性形式，促进有氧糖酵解（Warburg效应），这是癌症代谢的标志。PKM2作为基因表达的调节因子，通过转运到细胞核，作为转录共激活因子，促进HIF-1α和STAT3等蛋白的转录，影响肿瘤的进展和免疫反应。PKM2通过磷酸化、乙酰化和泛素化等翻译后修饰进行严格调控，这些修饰调节其酶活性、聚合状态和核转运。PKM2重新编程细胞代谢以支持癌细胞的合成生长，同时调节如凋亡、细胞周期进展、上皮-间质转化（EMT）和炎症等过程。它通过PI3K/Akt/mTOR和MAPK等信号通路促进增殖和存活。PKM2的失调有助于肿瘤发生、转移、免疫逃逸和神经系统疾病。

特异性

Anti-PKM2 Mouse Antibody [L22N15] 用于检测内源性 PKM2 总的蛋白水平。

背景

PKM2（丙酮酸激酶M2）是一种多功能的糖酵解酶，由PKM基因编码，主要在癌细胞、胚胎组织和增殖细胞中表达。它催化糖酵解的最后一步，将磷酸烯醇丙酮酸（PEP）转化为丙酮酸，存在两种形式：一种是四聚体高活性形式，推动糖酵解；另一种是二聚体低活性形式，促进有氧糖酵解（Warburg效应），这是癌症代谢的标志。PKM2作为基因表达的调节因子，通过转运到细胞核，作为转录共激活因子，促进HIF-1α和STAT3等蛋白的转录，影响肿瘤的进展和免疫反应。PKM2通过磷酸化、乙酰化和泛素化等翻译后修饰进行严格调控，这些修饰调节其酶活性、聚合状态和核转运。PKM2重新编程细胞代谢以支持癌细胞的合成生长，同时调节如凋亡、细胞周期进展、上皮-间质转化（EMT）和炎症等过程。它通过PI3K/Akt/mTOR和MAPK等信号通路促进增殖和存活。PKM2的失调有助于肿瘤发生、转移、免疫逃逸和神经系统疾病。

使用信息

抗体应用

WB, IP, IHC, IF, ELISA

稀释比例

WB	IP	IHC	IF
1:5000-1:30000	1:200	1:100-1:1000	1:200-1:800

反应性

Human, Mouse, Rat

抗体类型

Mouse

MW

58 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声破碎，冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:5000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声破碎，冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:5000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: MCF7
Lane 2: HepG2
Lane 3: 3T3
Lane 4: 293

IF

Validated by Selleck

Immunofluorescent analysis of Hela cells using F2704 (green, 1:200), Hoechst (blue) and tubulin (Red).