Anti-Tin2 Rabbit Antibody [K6G20] Datasheet

生物描述

特异性	Anti-Tin2 Rabbit Antibody [K6G20] 可检测内源性 Tin2 总蛋白水平。
背景	TIN2（TRF1相互作用核因子2）是保护哺乳动物端粒的六蛋白复合体（shelterin complex）中的中心支架蛋白。shelterin complex由六蛋白组成，负责保护哺乳动物的端粒，调节端粒的长度和完整性。TIN2包含一个端粒重复因子同源性(TRFH)结构域、一个TRFH结合基序(TBM)和一个与先天性角化不良突变相关的结构域。TIN2通过其TBM和TRFH结构域与双链端粒DNA结合蛋白TRF1和TRF2相互作用，并直接与TPP1结合，促进POT1和TPP1在端粒上的组装，这对于保护单链端粒DNA至关重要。TIN2主要有两种亚型：TIN2S和TIN2L，它们调节端粒的稳定性和结构。 TIN2 协调顺式（DNA 压缩）和反式（DNA-DNA 或 DNA-RNA 桥接）相互作用，维持端粒的结构完整性。TIN2 缺失会导致端粒脱保护、DNA 损伤反应（ATM/ATR 激酶）激活、染色单体融合，并可能导致胚胎致死。TIN2 还与黏连蛋白亚基 SA1 相互作用，调节姐妹端粒的黏连，而 Tankyrase1 则控制 TRF1-TIN2 与端粒的结合。TIN2 作为一个协同平台，桥接 TRF1、TRF2 和 TPP1，使 Shelterin 发挥染色体末端保护、端粒酶调控和基因组稳定性的功能。TIN2 的突变或功能障碍与早衰综合征和癌症易感性相关。

特异性

Anti-Tin2 Rabbit Antibody [K6G20] 可检测内源性 Tin2 总蛋白水平。

背景

TIN2（TRF1相互作用核因子2）是保护哺乳动物端粒的六蛋白复合体（shelterin complex）中的中心支架蛋白。shelterin complex由六蛋白组成，负责保护哺乳动物的端粒，调节端粒的长度和完整性。TIN2包含一个端粒重复因子同源性(TRFH)结构域、一个TRFH结合基序(TBM)和一个与先天性角化不良突变相关的结构域。TIN2通过其TBM和TRFH结构域与双链端粒DNA结合蛋白TRF1和TRF2相互作用，并直接与TPP1结合，促进POT1和TPP1在端粒上的组装，这对于保护单链端粒DNA至关重要。TIN2主要有两种亚型：TIN2S和TIN2L，它们调节端粒的稳定性和结构。 TIN2 协调顺式（DNA 压缩）和反式（DNA-DNA 或 DNA-RNA 桥接）相互作用，维持端粒的结构完整性。TIN2 缺失会导致端粒脱保护、DNA 损伤反应（ATM/ATR 激酶）激活、染色单体融合，并可能导致胚胎致死。TIN2 还与黏连蛋白亚基 SA1 相互作用，调节姐妹端粒的黏连，而 Tankyrase1 则控制 TRF1-TIN2 与端粒的结合。TIN2 作为一个协同平台，桥接 TRF1、TRF2 和 TPP1，使 Shelterin 发挥染色体末端保护、端粒酶调控和基因组稳定性的功能。TIN2 的突变或功能障碍与早衰综合征和癌症易感性相关。

使用信息

抗体应用

WB

稀释比例

WB

1:1000

反应性

Mouse, Rat, Human

抗体类型

Rabbit

MW

50 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Anti-Tin2 Rabbit Antibody [K6G20]

生物描述

使用信息

文献参考

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