APC1 Antibody [C16G2]

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生物描述

特异性 APC1 Antibody [C16G2] 可检测内源性 APC1 总蛋白水平。
背景 APC1是后期促进复合物/细胞周期蛋白体(APC/C)中最大的支架亚基,APC/C是一种多亚基E3泛素连接酶,对有丝分裂进程和底物特异性蛋白酶体降解至关重要。其结构包含一个N端WD40 β螺旋桨结构域,该结构域通过α螺旋螺线管与一个中央PC重复序列平台结构域相连,该平台结构域锚定包括APC4、APC5和APC15在内的APC/C核心组分,从而形成结构平台。在前中期,CDK1和PLK1激酶靶向APC1的N端自抑制环进行多位点磷酸化,诱导构象释放,从而暴露共激活因子结合平台,并允许CDC20通过与APC1的WD40重复序列和APC8的直接相互作用而对接。这种磷酸化依赖性开关通过变构重排APC11-RING:APC2催化模块,增强E2酶UBE2C和UBE2S的募集,从而启动底物(如细胞周期蛋白B、Securin和Aurora激酶)D-box和KEN-box基序上的K11连接的多聚泛素化链。APC1通过其扩展的平台界面,进一步稳定有丝分裂后期和G1期Cdh1的结合,拓宽底物范围,使其包含geminin和Cdt1,从而实现许可控制。有丝分裂磷酸化峰值与纺锤体组装检查点的满足相一致,PP2A-B55δ的去磷酸化作用使APC/C^Cdh1^在胞质分裂完成过程中占据主导地位。WD40结构域直接与CDC20的C-box接触,将变构激活传递至催化核心,同时保持旋转灵活性,以进行动态的E2-底物相互作用。普遍表达支持其在细胞周期研究中的普遍适用性,siRNA介导的耗竭可导致中期停滞和多倍体。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:200
反应性 Human, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 216 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:250 mA, 180 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: 293T, Lane 2: MOLT-4, Lane 3: MCF7, Lane 4: COS7