Artemis Antibody [H20J21]

目录号:F1506

打印

生物描述

特异性 Artemis Antibody [H20J21] 可检测内源性 Artemis 总蛋白水平。
背景 Artemis(DCLRE1C,又名 SNM1C)是一种普遍表达的核核酸酶,属于金属β-内酰胺酶(MBL)超家族,对发育中的淋巴细胞的非同源末端连接(NHEJ)DNA修复和V(D)J重组至关重要。 Artemis 是一种由 692 个氨基酸组成的蛋白质,其 N 端催化结构域(残基 1-360)包含一个核心 MBL 折叠(α/β-β/α 三明治结构)和一个嵌入的 β-CASP 亚结构域,该亚结构域包含保守基序 1-4(His33、His35、His115、Asp116 与 Zn²⁺ 离子 M1/M2 配位)和用于核酸加工的基序 AC,以及一个主要无结构的 C 端调节尾(残基 361-692),该调节尾可自身抑制活性并介导 DNA-PKcs 连接。 DNA-PKcs在识别DSB后磷酸化Artemis(例如,Thr127、Ser251位点),激活其结构特异性核酸内切酶活性,从而在V(D)J重组中打开发夹结构封闭的编码末端,在NHEJ中修剪5'/3'突出端、瓣状结构和气泡,以利于XRCC4/LIG4连接,并处理IR诱导的复杂末端,同时通过53BP1-PTIP相互作用拮抗HR。ATM/ATR进一步磷酸化Artemis,以恢复G2/M期和S期检查点,促进Cdk1-cyclin B激活和cyclin E降解(通过SCFFbw7)。双等位基因突变会导致放射敏感性重症联合免疫缺陷(RS-SCID),伴有V(D)J连接缺陷和基因组不稳定,易患恶性肿瘤。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:200
反应性 Human, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 90 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。(建议曝光时长 60s 以上)
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: Jurkat, Lane 2: HT-29, Lane 3: PC-3, Lane 4: MCF-7