ATP6V1B2 Antibody [K16G16]

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生物描述

特异性 ATP6V1B2 Antibody [K16G16] 可检测内源性 ATP6V1B2 总蛋白水平。
背景 ATP6V1B2 是液泡 H+-ATPase (V-ATPase) 复合物中 V1 区的 B2 亚型,该复合物作为 ATP 驱动的质子泵,酸化溶酶体、内体等细胞内区室以及某些质膜。它与 A 亚基共同构成外周 V1 结构域的催化六聚体,该六聚体具有核苷酸结合位点,可驱动旋转 ATP 水解,从而为质子通过膜嵌入的 V0 区转运提供动力。含有 ATP6V1B2 的 V-ATPase 直接与溶酶体表面的 Ragulator-Rag GTPase 复合物相互作用,感知氨基酸的可用性,从而触发 mTORC1 的募集和激活;在亮氨酸或精氨酸刺激下,V-ATPase质子泵产生局部酸性微环境,稳定RagA/B的GTP结合状态,促进mTORC1通过Raptor与mTORC1对接,并随后磷酸化S6K1/4EBP1,从而促进合成代谢翻译,同时抑制分解代谢。这种质子梯度还将溶酶体生物合成与营养信号传导相偶联。ATP6V1B2突变会损害酸化作用,破坏自噬通量,但矛盾的是,它通过改变v-ATPase的解离-重组动力学来维持mTORC1活性。ATP6V1B2通过协调溶酶体降解与生长决策,在营养波动的环境中维持细胞稳态,使其成为研究氨基酸感知或巨胞饮作用的理想靶点,因为v-ATPase抑制揭示了mTORC1依赖性。体细胞突变引起的失调激活自噬,同时保留 mTORC1,有助于 B 细胞淋巴瘤在亮氨酸缺乏的情况下存活,而导致远端肾小管酸中毒的变异则表现出酸碱平衡受损。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human, Mouse, Rat, Monkey
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 55 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: 293, Lane 2: ACHN, Lane 3: COS-7, Lane 4: vero