DDB-2 Antibody [M14F11]

目录号:F1449

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生物描述

特异性 DDB-2 Antibody [M14F11] 可检测内源性 DDB-2 总蛋白水平。
背景 DDB2(损伤特异性DNA结合蛋白2)是由位于11p12-p11染色体上的人类DDB2基因编码的蛋白质。它在核苷酸切除修复(NER)途径中起着至关重要的作用,它识别并结合紫外线诱导的DNA损伤,从而启动修复。DDB2包含几个关键结构域:一个负责DNA相互作用的末端七叶WD40 β-螺旋结构域;一个富含赖氨酸残基的无序N端尾部,可作为泛素化位点;以及一个螺旋-环-螺旋基序(残基101-136),它与DDB1相互作用形成UV-DDB复合物,这对于损伤DNA识别至关重要。识别到紫外线损伤后,DDB2 会激活 Cullin 4-RING 泛素连接酶复合物 (CRL4^DDB2^),该复合物会泛素化组蛋白、XPC 和 DDB2 本身,从而促进染色质重塑和高效修复。DDB2 水平在整个细胞周期中波动:在 G1 期中期升高,在 G1/S 期边界达到峰值,在 S 期下降,这反映了其在 DNA 损伤反应和细胞周期调控中的作用。DDB2 的表达受到严格调控:其转录由 p53 和 TAp63γ 激活,而活性氧和 AP1 转录因子也以 p53 非依赖的方式诱导其表达。翻译后修饰,包括泛素化、p38 MAPK 磷酸化、聚(ADP-核糖基化)和 SUMO 化,动态调节 DDB2 的稳定性、染色质结合和修复功能。此外,DDB2通过降解p27和CDT2等抑制剂并稳定CDT1来影响细胞周期进程,从而有助于DNA复制许可。DDB2的失调与致癌作用有关,其表达水平与放化疗的敏感性相关。

使用信息

抗体应用 WB 稀释比例
WB
1:1000
反应性 Human
抗体类型 Rabbit Monoclonal Antibody MW 43 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含蛋白酶抑制剂Cocktail),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜) PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min
(注意电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: Raji, Lane 2: HL-60