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缓冲液配制: PBS缓冲液(pH 7.2)包括0.5%的BSA和2 mM EDTA,需预先通过0.22 μm滤膜过滤除菌。
1. 细胞准备: 准备新鲜的PBMC或液氮冻存的PBMC,调整细胞密度为1×108 cells/mL。
2. CD14微珠标记:每107细胞中加入 10 µL CD14微珠,混匀后 4 ℃孵育15 min,每隔5 min轻弹混匀,避免细胞聚集。
注意: 分选更多细胞时,按比例增加CD14微珠用量(如分选5×107细胞,需在500 μL细胞悬液中加入50 μL CD14微珠)。
3. 洗涤细胞:孵育完成后,加入1 mL分选buffer(避免剧烈振荡或上下颠倒混匀)。300 g离心3 min,弃上清,加入1 mL分选buffer重悬细胞。
4. 磁珠分选:
将分选柱置于MACS分离器的磁场中,用缓冲液冲洗分选柱(MS柱: 500 μL;LS柱: 3 mL)。
将细胞悬液加入分选柱,收集未标记的流经细胞(可选),再用分选液清洗分选柱(MS柱: 2×1 mL;LS柱: 2×3 mL)。
5. 收集CD14阳性细胞:移出分选柱,加入适量缓冲液,用柱塞快速冲洗,收集磁性标记的CD14阳性细胞(MS柱: 2×1 mL;LS柱: 2×3 mL)。
注意: 每次液体完全流尽后再进行下一步操作。
6. (可选)二次富集: 若需更高纯度,可重复步骤4-5,在第二个分选柱上再次富集CD14阳性细胞。
实验全程保持低温(4℃),动作迅速以减少细胞损伤。