Phospho-Smad1 (Ser 206) Rabbit mAb

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生物描述

特异性

Phospho-Smad1 (Ser 206) Rabbit mAb 用于检测当 Ser 206 位点磷酸化时内源性 Phospho-SMAD1 (Ser206) 总的蛋白水平。

背景

SMA 和 SMAD1 也称为 JV4-1、MADH1 或 MADR1,位于人类染色体 5q4 上。它最初是在探索乳腺癌发病机制相关基因的研究中发现的,此后被认为是肿瘤进展的关键调控因子。SMAD1 是 TGF-β 信号传导的关键介质,在各种生物过程中起着关键作用,包括细胞生长、凋亡、发育和免疫应答。它与多种恶性肿瘤的进展有关。SMAD1 传递来自骨形态发生蛋白 (BMP) 的信号,这些蛋白调控多种细胞活动,如生长、凋亡、发育和免疫应答。BMP 配体通过 BMP 受体激酶的磷酸化激活 SMAD1。一旦磷酸化,SMAD1 就会与 SMAD4 形成复合物,SMAD4 会转位到细胞核中,与转录协同调控基因转录因子。已知 SMAD1 可促进各种癌症类型的细胞侵袭和转移。例如,SMAD1 过表达可增强胃癌细胞对 BMP-7 的增殖,并在 BMP-9 激活后支持卵巢癌细胞的生长。此外,MAP 激酶和 CDK 8 和 9 磷酸化 SMAD1 连接区中的残基,包括 Ser206。Ser206 处的磷酸化将 Smurf1 招募到连接区,导致 SMAD1 降解。有趣的是,这种磷酸化还通过促进 YAP 招募到连接区来增强 SMAD1 转录活性。

使用信息

抗体应用 WB, IP 稀释比例
WB IP
1:1000 1:50
反应性 Human
抗体类型 Rabbit MW 60 kDa
储存液配方 PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃
储存条件
(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
WB
实验步骤:
 
样品制备
1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含PMSF, Phosphatase Inhibitor),低温匀浆。
2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含PMSF, Phosphatase Inhibitor),冰上静置裂解 5 min。
3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer (含PMSF, Phosphatase Inhibitor),冰上静置裂解 5 min。
4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
 
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
 
转膜
1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
53.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
4.将蛋白电转移至 PVDF膜上(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜)。 PVDF 膜孔径规格选择参照表
湿转法参考条件:200 mA, 120 min。(电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
 
封闭
1. 电转移后,室温下用 TBST 洗膜 5 min;
2. 在封闭液(建议使用 5% BSA溶液)中将膜孵育 1 h,室温;
3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
抗体孵育
1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
 
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
 

Application Data

WB

Validated by Selleck

  • Lane 1: HeLa
    Lane 2: HeLa (UV-treated)