TRAF2 Rabbit mAb Datasheet

生物描述

特异性	TRAF2 Rabbit mAb 检测内源性 TRAF2 总的蛋白水平。
背景	TRAF2（TNF 受体相关因子 2）是一种关键的衔接蛋白，主要通过其在 TNF 受体介导的信号传导中的作用参与各种细胞过程。它充当信号枢纽，促进下游信号分子的募集和激活。在 TNFR2 信号传导中，TRAF2 与其他 TRAF 和衔接蛋白（如 RIPK1）相互作用以激活 NF-κB 通路，从而驱动与炎症、免疫和细胞存活有关的基因的表达。此外，TRAF2 介导 JNK 通路的激活，有助于应激反应和细胞凋亡调控。TRAF2 的 E3 泛素连接酶活性是其功能的核心。它催化靶蛋白上 K63 连接的多泛素链的形成，为下游信号复合物创建对接位点。这种泛素化对于激活 NF-κB 的 IKK 复合物的募集以及涉及 MAPK（如 p38 和 JNK）的信号级联至关重要，这些级联可调控炎症、细胞凋亡和细胞分化。它还有助于调控细胞凋亡，根据具体情况，它可以抑制或促进细胞死亡。它通过 NF-κB 通路激活促存活信号，同时与 caspase 相关蛋白相互作用以影响细胞凋亡过程，从而实现这种平衡。在某些条件下，例如细胞应激或 TNFR1 信号传导，TRAF2 促进 RIPK1 介导的导致细胞凋亡或坏死性凋亡的通路。TRAF2 参与各种病理状况的发展，包括自身免疫性疾病、癌症和神经退行性疾病。

特异性

TRAF2 Rabbit mAb 检测内源性 TRAF2 总的蛋白水平。

背景

TRAF2（TNF 受体相关因子 2）是一种关键的衔接蛋白，主要通过其在 TNF 受体介导的信号传导中的作用参与各种细胞过程。它充当信号枢纽，促进下游信号分子的募集和激活。在 TNFR2 信号传导中，TRAF2 与其他 TRAF 和衔接蛋白（如 RIPK1）相互作用以激活 NF-κB 通路，从而驱动与炎症、免疫和细胞存活有关的基因的表达。此外，TRAF2 介导 JNK 通路的激活，有助于应激反应和细胞凋亡调控。TRAF2 的 E3 泛素连接酶活性是其功能的核心。它催化靶蛋白上 K63 连接的多泛素链的形成，为下游信号复合物创建对接位点。这种泛素化对于激活 NF-κB 的 IKK 复合物的募集以及涉及 MAPK（如 p38 和 JNK）的信号级联至关重要，这些级联可调控炎症、细胞凋亡和细胞分化。它还有助于调控细胞凋亡，根据具体情况，它可以抑制或促进细胞死亡。它通过 NF-κB 通路激活促存活信号，同时与 caspase 相关蛋白相互作用以影响细胞凋亡过程，从而实现这种平衡。在某些条件下，例如细胞应激或 TNFR1 信号传导，TRAF2 促进 RIPK1 介导的导致细胞凋亡或坏死性凋亡的通路。TRAF2 参与各种病理状况的发展，包括自身免疫性疾病、癌症和神经退行性疾病。

使用信息

抗体应用

WB, IP, IHC, IF, FCM

稀释比例

WB	IP	IHC	IF	FCM
1:1000	1:50	1:100	1:100	1:100

反应性

Human, Rat

抗体类型

Rabbit

MW

55 kDa

储存液配方

PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃

储存条件
(自收到货起)

-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

实验方法
WB	实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Tris-HCL Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Tris-HCL Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Tris-HCL Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 53.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验方法

WB

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Tris-HCL Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Tris-HCL Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Tris-HCL Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

53.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

文献参考

[1] MacEwan DJ. Cell Signal. 2002 Jun;14(6):477-92.

Application Data

WB

Validated by Selleck

Lane 1: PC12
Lane 2: MOLT-4
Lane 3: Hela
Lane 4: 293