Argonaute 3 Rabbit mAb

目录号: F1322

Lane 1: PANC-1
Lane 2: HeLa
Lane 3: C2C12

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

蛋白定位：细胞质。
WB
建议使用 RIPA/NP-40 Lysis Buffer 制备裂解物。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:50

抗体应用
WB, IP

抗体类型
Rabbit

反应性
Human, Mouse, Monkey

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃

储存条件(自收到货起)
–20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
97 kDa

阳性对照	PANC-1; HeLa; C2C12
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Argonaute 3 Rabbit mAb 可检测内源性总 Argonaute 3 的蛋白水平。

Uniprot ID
Q9H9G7

克隆号
K16F10

背景
Argonaute 蛋白属于一个高度保守的家族，该家族通过 RNA 干扰 (RNAi) 等途径在基因沉默中发挥关键作用。该家族分为 AGO 和 PIWI 蛋白，这两种蛋白都与长度为 21 至 35 个核苷酸的小 RNA 向导结合，然后指导特定基因的沉默。Argonaute-小 RNA 复合物可以抑制基因转录、诱导位点特异性切割或靶 mRNA 的一般降解，或抑制 mRNA 翻译成蛋白质。AGO 蛋白特异性地与长度约为 21 个核苷酸的小干扰 RNA (siRNA) 和 microRNA (miRNA) 结合。这些 siRNA 和 miRNA 由双链 RNA 前体通过 RNase III 酶（如 Dicer）加工而成。AGO 蛋白对于发育和分化至关重要，在许多植物和动物中，它们在保护细胞免受病毒感染方面发挥作用。在哺乳动物中，有四种 Argonaute 蛋白，其中 Argonaute 2 (Ago2) 是唯一具有切片内切酶活性的蛋白。这些蛋白有四个保守结构域：N 端、PAZ（结合小 RNA）、Mid 和 PIWI（提供催化功能）。除了基因沉默之外，Argonaute 蛋白还参与维持染色体完整性、帮助 siRNA 和 miRNA 成熟，并参与生成一类称为 Piwi 相互作用 RNA (piRNA) 的新型小非编码 RNA。

背景

Argonaute 蛋白属于一个高度保守的家族，该家族通过 RNA 干扰 (RNAi) 等途径在基因沉默中发挥关键作用。该家族分为 AGO 和 PIWI 蛋白，这两种蛋白都与长度为 21 至 35 个核苷酸的小 RNA 向导结合，然后指导特定基因的沉默。Argonaute-小 RNA 复合物可以抑制基因转录、诱导位点特异性切割或靶 mRNA 的一般降解，或抑制 mRNA 翻译成蛋白质。AGO 蛋白特异性地与长度约为 21 个核苷酸的小干扰 RNA (siRNA) 和 microRNA (miRNA) 结合。这些 siRNA 和 miRNA 由双链 RNA 前体通过 RNase III 酶（如 Dicer）加工而成。AGO 蛋白对于发育和分化至关重要，在许多植物和动物中，它们在保护细胞免受病毒感染方面发挥作用。在哺乳动物中，有四种 Argonaute 蛋白，其中 Argonaute 2 (Ago2) 是唯一具有切片内切酶活性的蛋白。这些蛋白有四个保守结构域：N 端、PAZ（结合小 RNA）、Mid 和 PIWI（提供催化功能）。除了基因沉默之外，Argonaute 蛋白还参与维持染色体完整性、帮助 siRNA 和 miRNA 成熟，并参与生成一类称为 Piwi 相互作用 RNA (piRNA) 的新型小非编码 RNA。

参考文献
[1] Hutvagner G, et al. Nat Rev Mol Cell Biol. 2008 Jan;9(1):22-32.

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%