β-Arrestin 2 Rabbit mAb
目录号: F0667
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操作要点
蛋白定位：细胞膜；包被小窝；细胞质；胞质囊泡；内膜；细胞核。
WB
建议使用 RIPA/NP-40 Lysis Buffer 制备裂解物。
WB
建议使用 RIPA/NP-40 Lysis Buffer 制备裂解物。
使用信息
| 稀释比例 |
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| 抗体应用 |
|---|
| WB, IHC |
| 抗体类型 |
|---|
| Rabbit |
| 反应性 |
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| Human, Mouse, Rat, Monkey |
| 储存液配方 |
|---|
| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃ |
| 储存条件(自收到货起) |
|---|
| –20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
| 预测分子量 |
|---|
| 50 kDa |
| 阳性对照 | Jurkat; COS; NIH3T3; Hela |
|---|---|
| 阴性对照 |
实验方法
| WB |
|---|
实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
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| IHC |
|---|
实验步骤： 脱蜡/补液
1. 脱蜡/水合切片：
2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次，每次 5 分钟。
3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次，每次 10 分钟。
4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次，每次 10 分钟。
5. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
6.抗原修复：对于柠檬酸盐：将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中，在微波炉中加热，直至开始沸腾； 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
染色
1. 用 dH2O 清洗切片 3 次，每次 5 分钟。
2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
3. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
6. 除去封闭液，并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
7. 去除抗体溶液，用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次，每次 5 分钟。
10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
13. 如果需要，用苏木精复染切片。
14. 用 dH2O 清洗切片两次，每次 5 分钟。
15. 切片脱水：95%乙醇孵育切片两次，每次 10 秒； 在 100% 乙醇中重复，孵育切片两次，每次 10 秒； 在二甲苯中重复，孵育切片两次，每次 10 秒。
16. 用盖玻片和封固剂封固切片。 |
生物描述
| 特异性 |
|---|
β-Arrestin 2 Rabbit mAb 可检测内源性 β-Arrestin 2 总的蛋白水平。 |
| Uniprot ID |
|---|
| P32121 |
| 克隆号 |
|---|
| P23M8 |
| 背景 |
|---|
抑制蛋白是一种多功能蛋白，在调控 G 蛋白偶联受体 (GPCR) 脱敏、信号传导和内化方面发挥关键作用。抑制蛋白家族由四种亚型组成：视觉抑制蛋白 1、β-抑制蛋白 1、β-抑制蛋白 2 和视觉抑制蛋白 4。除了在 GPCR 信号传导中发挥作用外，β-抑制蛋白还充当支架和衔接蛋白，它们还可以与非 GPCR 受体相互作用。越来越多的证据表明，β-抑制蛋白与各种神经退行性疾病的发展有关，例如阿尔茨海默病 (AD)、额颞叶痴呆 (FTD) 和帕金森病 (PD)。在 AD 中，β-抑制蛋白直接与 γ-分泌酶相互作用，导致淀粉样蛋白-β 的产生和积累增加。在 FTD 中，β-arrestin 寡聚体抑制自噬货物受体 p62/SQSTM1，导致 tau 蛋白的积累和聚集。β-arrestin1 和 β-arrestin2 具有 78% 的序列相似性，具有重叠的功能，包括调控受体脱敏、内化和信号传导。这些蛋白质广泛表达于各种哺乳动物细胞类型和组织中，包括上皮细胞、内皮细胞和平滑肌细胞，并且在大脑中尤其丰富。β-arrestin2 主要位于细胞质中，但在其 N 端包含一个核定位信号 (NLS)，这有助于核输入，以及一个 C 端核输出信号 (NES)，使其能够从细胞核中输出。这使得 β-arrestin2 能够在细胞质和细胞核之间穿梭。作为支架和衔接蛋白，β-抑制蛋白还在其他细胞过程中发挥关键作用，例如将 c-Src 家族蛋白募集到 GPCR 以参与 Erk 激活途径，并参与受体酪氨酸激酶的信号传导途径。此外，有证据表明 β-抑制蛋白可以转位到细胞核，在那里它们通过与转录辅因子相互作用来帮助调控基因转录。 |
| 参考文献 |
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