抗体应用：
反应性：
-
Lane 1: Hela
Lane 2: Mouse brain
Lane 3: Rat brain
操作要点
WB
建议一抗稀释比: 1:100000
建议曝光 180s 以上。
建议一抗稀释比: 1:100000
建议曝光 180s 以上。
使用信息
| 稀释比例 |
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| 抗体应用 |
|---|
| WB, IP, IHC, IF, FCM |
| 反应性 |
|---|
| Human, Mouse, Rat |
| 抗体类型 |
|---|
| Rabbit |
| 储存液配方 |
|---|
| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃ |
| 储存条件(自收到货起) |
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| -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
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预测分子量
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47 kDa
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实验方法
| WB |
|---|
实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声破碎，冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 120 min。
（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:100000 00），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 180s 以上)
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生物描述
| 特异性 |
|---|
MST4 Rabbit mAb 用于检测内源性 MST4 总的蛋白水平。 |
| 克隆号 |
|---|
| C13G20 |
| 背景 |
|---|
哺乳动物STE20样蛋白激酶4（MST4），又称STK26，是丝氨酸/苏氨酸激酶，属于生发中心激酶（GCK）III亚家族，成员还包括MST3和STK25。MST4主要在胸腺、胎盘、淋巴细胞和白细胞中表达，调控包括有丝分裂、细胞极性、迁移、凋亡和分化等关键生命过程。其结构包括N端保守激酶结构域（氨基酸1–297）、C端二聚化结构域（氨基酸347–416）以及包含蛋白结合位点的连接区（氨基酸298–346），可与CCM3等衔接蛋白相互作用。功能上，MST4通过激活Ezrin-AKT通路促进上皮-间质转化（EMT）与细胞生存，诱导Snail、Slug、N-cadherin等EMT转录因子表达，并磷酸化促凋亡蛋白BAD，从而在结直肠癌、胃癌、胶质母细胞瘤、肝癌和乳腺癌等多种癌症中展现促肿瘤作用，具备潜在的治疗靶点及生物标志物价值。 |
| 参考文献 |
|---|
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