Non-phospho 4E-BP1 (Thr 46) Rabbit mAb
目录号: F0585
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Lane 1: COS (λ phosphatase treated)
Lane 2: COS (FBS treated)
操作要点
蛋白定位：细胞质; 细胞核。
WB
建议使用 RIPA/NP-40 Lysis Buffer 制备裂解物。
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：20%。
湿转参考条件：200 mA, 60 min，建议使用 0.22 μm PVDF膜。
WB
建议使用 RIPA/NP-40 Lysis Buffer 制备裂解物。
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：20%。
湿转参考条件：200 mA, 60 min，建议使用 0.22 μm PVDF膜。
使用信息
| 稀释比例 |
|---|
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| 抗体应用 |
|---|
| WB, IF, FCM |
| 抗体类型 |
|---|
| Rabbit |
| 反应性 |
|---|
| Human, Mouse, Rat, Monkey |
| 储存液配方 |
|---|
| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃ |
| 储存条件(自收到货起) |
|---|
| –20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
| 预测分子量 |
|---|
| 15-20 kDa |
| 阳性对照 | COS (λ phosphatase treated); 293 (serum starved; U0126,10 μM, 2 h; LY294002, 50 μM, 2 h; Rapamycin, 10 nM, 2 h); 293 (serum starved; l phosphatase, 10000 U/mL, 2 h); HEK-293 (Insulin, 100 nM, 30 min); HEK-293 (U0126, 10 µm, 2 h; LY294002,50 µM, 2 h; Rapamycin, 10 µM, 2 h); HEK-293 (Insulin, 100 nM, 30 min; λ phosphatase treated) |
|---|---|
| 阴性对照 |
实验方法
| WB |
|---|
实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：20 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 60 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭（可选）
1. 电转移后，室温下用 TBS 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 5% 的脱脂奶粉来配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
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| IF |
|---|
实验步骤： 标本制备
1. 吸出液体，然后用 1X PBS 稀释的 4% 多聚甲醛覆盖细胞至 2-3 mm 的深度。
注意：多聚甲醛有毒，只能在通风橱中使用。
2. 室温固定细胞 15 分钟。
3. 吸出固定液，用 1X PBS 冲洗 3 次，每次 5 分钟。
4. 继续进行免疫染色。
免疫染色
1. 添加封闭缓冲液并在室温下孵育 60 分钟。
2. 按照建议在抗体稀释缓冲液中制备一抗稀释液。
3. 吸出封闭液，加入制备好的一抗稀释液。
4. 4°C 孵育过夜。
5. 在 1X PBS 中冲洗 3 次，每次 5 分钟。
6. 将样本放入用抗体稀释缓冲液稀释的荧光染料偶联二抗中，室温避光孵育 1-2 小时。
7. 在 1X PBS 中冲洗 3 次，每次 5 分钟。
8. 使用带有 DAPI 的封固剂封固载玻片并盖上盖玻片。
9. 为获得最佳效果，请让封固剂在室温下固化过夜。 如需长期保存，请将载玻片平放在 4°C 避光保存。
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生物描述
| 特异性 |
|---|
Non-phospho 4E-BP1 (Thr 46) Rabbit mAb 可检测当 Thr 46位点去磷酸化时 4E-BP1 内源性总的蛋白水平。 |
| Uniprot ID |
|---|
| Q13542 , Q13541 , O60516 |
| 克隆号 |
|---|
| L9H10 |
| 背景 |
|---|
真核翻译起始因子 4E 结合蛋白 1 (4E-BP1) 是翻译抑制因子家族的成员，也是雷帕霉素 (mTOR) 信号通路机制靶点的关键底物。当 4E-BP1 被磷酸化时，它会释放 eIF4E，从而允许依赖于帽子的翻译进行。磷酸化的 4E-BP1 被广泛认为是活跃的 mTOR 信号传导的指标。4E-BP1 上有七个已知的磷酸化位点：Thr37、Thr46、Ser65、Thr70、Ser83、Ser101 和 Ser112。其中前五个位点在物种间是保守的，Thr37 和 Thr46 位点的磷酸化是初始启动步骤，随后是 Thr70 位点的磷酸化，最后是 Ser65 位点的磷酸化。4E-BP1 的过度磷酸化会破坏其与 eIF4E 的相互作用，从而激活帽子依赖性翻译。4E-BP1 的活性受 PI3K/Akt 通路和 FRAP/mTOR 激酶的调控。 |
| 参考文献 |
|---|
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