RBL2 Rabbit mAb

目录号: F1961

Lane 1: HT29
Lane 2: C2C12
Lane 3: Vero

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

蛋白定位：细胞核。
WB
建议使用 RIPA/Nuclear Lysis Buffer 制备裂解物。
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：5%。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:100 CHIP1:50

抗体应用
WB, IP, ChIP

抗体类型
Rabbit

反应性
" Human, Mouse, Rat, Monkey"

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃

储存条件(自收到货起)
–20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
130 kDa

阳性对照	HT-29; C2C12; H-4-II-E; 293; 3T3
阴性对照	293 (transfected with 100 nM RBL2 siRNA I)

样品处理数据示例

样品	处理情况
Vero	Low expression
293	Tansfection (100 nM RBL2 siRNA I)
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^*该蛋白在不同的人源细胞、组织内的表达量预测请参考：http://www.proteinatlas.org

样品	处理情况

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭（可选） 1. 电转移后，室温下用 TBS 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用 5% 的脱脂奶粉来配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭（可选）

1. 电转移后，室温下用 TBS 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用 5% 的脱脂奶粉来配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
RBL2 Rabbit mAb 可检测内源性总 RBL2 的蛋白水平。该抗体不会与 Rb 或 RBL1 蛋白发生交叉反应。

Uniprot ID
Q08999

克隆号
G2F19

背景
视网膜母细胞瘤样蛋白 2 (Retinoblastoma-like Protein 1, RBL2/p130) 是视网膜母细胞瘤 (Rb) 肿瘤抑制因子家族的成员，该家族还包括 Rb (p105) 和视网膜母细胞瘤样蛋白 1 (RBL1, p107)。与其他 Rb 家族蛋白一样，RBL2 包含一个保守的结合口袋，可与关键调控蛋白（如 E2F 转录因子和具有 LXCXE 基序的蛋白）相互作用。在静止的 G0 期细胞中，RBL2 主要处于活性和低磷酸化状态，与 E2F4 和 E2F5 结合形成 DREAM 复合物，抑制进入 S 期和有丝分裂所必需的基因的转录。这种抑制会阻止细胞周期进程。在生长因子刺激下，RBL2 被细胞周期蛋白依赖性激酶 (CDK) 过度磷酸化并释放 E2F 因子，导致转录激活和细胞周期进程。RBL2 通过保持低磷酸化状态在维持细胞衰老方面发挥着至关重要的作用，这对于衰老细胞的稳定性至关重要。

背景

视网膜母细胞瘤样蛋白 2 (Retinoblastoma-like Protein 1, RBL2/p130) 是视网膜母细胞瘤 (Rb) 肿瘤抑制因子家族的成员，该家族还包括 Rb (p105) 和视网膜母细胞瘤样蛋白 1 (RBL1, p107)。与其他 Rb 家族蛋白一样，RBL2 包含一个保守的结合口袋，可与关键调控蛋白（如 E2F 转录因子和具有 LXCXE 基序的蛋白）相互作用。在静止的 G0 期细胞中，RBL2 主要处于活性和低磷酸化状态，与 E2F4 和 E2F5 结合形成 DREAM 复合物，抑制进入 S 期和有丝分裂所必需的基因的转录。这种抑制会阻止细胞周期进程。在生长因子刺激下，RBL2 被细胞周期蛋白依赖性激酶 (CDK) 过度磷酸化并释放 E2F 因子，导致转录激活和细胞周期进程。RBL2 通过保持低磷酸化状态在维持细胞衰老方面发挥着至关重要的作用，这对于衰老细胞的稳定性至关重要。

参考文献
[1] Du W, et al. Oncogene. 2006 Aug 28;25(38):5190-200. [2] Giacinti C, et al. Oncogene. 2006 Aug 28;25(38):5220-7.

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%