RNA polymerase II CTD repeat YSPTSPS (phospho S5) Mouse mAb

目录号: F0023

    • Lane 1: MCF7
      Lane 2: NIH/3T3
      Lane 3: PC12
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    操作要点

    蛋白定位:细胞核 (PMID:26566685); 细胞质; 染色体 (PMID:28076779)
    WB
    建议使用 RIPA/Nuclear Lysis Buffer 制备裂解物。
    建议 SDS-PAGE 分离胶浓度:5%
    湿转参考条件:250 mA, 180 min

    使用信息

    稀释比例
    1:1000
    1:50 - 1:200
    1:1000
    1:50 - 1:200
    抗体应用
    WB, IF, IF, ChIP
    抗体类型
    Mouse
    反应性
    Human, Mouse, Rat
    储存液配方
    PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃
    储存条件(自收到货起)
    –20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years
    预测分子量
    217 kda
    阳性对照 U-2 OS; HeLa; MCF7; NIH/3T3; PC12; HEK293T
    阴性对照 MCF7s (alkaline phosphatase treated); NIH/3T3 (alkaline phosphatase treated); PC12 (alkaline phosphatase treated)

    实验方法

    WB
    实验步骤:
     
    样品制备
    1. 组织样品:破碎组织,加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含PMSF),低温匀浆。
    2. 贴壁细胞样品:吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含PMSF),冰上静置裂解 5 min。
    3. 悬浮细胞样品:将培养基转移至离心管中离心,弃上清,用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer (含PMSF),冰上静置裂解 5 min。
    4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min,收集上清液;
    5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度;
    6. 加入蛋白上样缓冲液,将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min,冰上静置冷却后离心 5 min。
     
    电泳分离
    1. 根据所提蛋白的浓度,将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶(即下层胶)浓度:5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表
    2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V,观察 Marker,待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后,即可停止电泳。(注意电泳时电流切勿过大,如超过 150 mA 会导致温度上升,容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流,可对电泳槽使用冰浴降温。)
     
    转膜
    1.拿出电转槽,把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中;
    2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min,用转移缓冲液冲洗;
    3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好;
    4.将蛋白电转移至 PVDF膜上(推荐采用 0.45 µm PVDF 膜)。 PVDF 膜孔径规格选择参照表
    湿转法参考条件:250 mA, 180 min。(电转条件可根据蛋白大小适当调节,分子量大的蛋白适宜采用大电流,并延长转膜时间,但需要确保电转槽始终处于低温的环境中,避免凝胶融化。)
     
    封闭(可选)
    1. 电转移后,室温下用 TBS 洗膜 5 min;
    2. 在封闭液中将膜孵育 1 h,室温;
    3. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
     
    抗体孵育
    1. 用 5% 的脱脂奶粉来配制一抗工作液(建议一抗稀释比 1:1000),4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜;
    2. 用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min;
    3. 在封闭液中加入二抗,室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h;
    4. 孵育结束后,用 TBST 洗膜 3 次,每次 5 min。
     
    显色
    1. 加入配制好的 ECL 发光底物(或根据二抗选择其他显色基质)混合均匀;
    2. 与膜孵育1 min,去除多余底物(需保持膜湿润),置于显影仪中进行曝光。
     
    IF
    实验步骤:
     
    标本制备
    1. 吸出液体,然后用 1X PBS 稀释的 4% 多聚甲醛覆盖细胞至 2-3 mm 的深度。
    注意:多聚甲醛有毒,只能在通风橱中使用。
    2. 室温固定细胞 15 分钟。
    3. 吸出固定液,用 1X PBS 冲洗 3 次,每次 5 分钟。
    4. 继续进行免疫染色。
     
    免疫染色
    1. 添加封闭缓冲液并在室温下孵育 60 分钟。
    2. 按照建议在抗体稀释缓冲液中制备一抗稀释液。
    3. 吸出封闭液,加入制备好的一抗稀释液。
    4. 4°C 孵育过夜。
    5. 在 1X PBS 中冲洗 3 次,每次 5 分钟。
    6. 将样本放入用抗体稀释缓冲液稀释的荧光染料偶联二抗中,室温避光孵育 1-2 小时。
    7. 在 1X PBS 中冲洗 3 次,每次 5 分钟。
    8. 使用带有 DAPI 的封固剂封固载玻片并盖上盖玻片。
    9. 为获得最佳效果,请让封固剂在室温下固化过夜。 如需长期保存,请将载玻片平放在 4°C 避光保存。
     
    IHC
    实验步骤:
     
    脱蜡/补液
    1. 脱蜡/水合切片:
    2. 将切片在二甲苯中孵育 3 次,每次 5 分钟。
    3. 将切片在 100% 乙醇中孵育两次,每次 10 分钟。
    4. 将切片在 95% 乙醇洗涤液中孵育两次,每次 10 分钟。
    5. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    6.抗原修复:对于柠檬酸盐:将载玻片浸入 1X 柠檬酸盐暴露溶液中,在微波炉中加热,直至开始沸腾; 在亚沸温度 (95°-98°C) 下继续煮 10 分钟。 在工作台上冷却玻片 30 分钟。
     
    染色
    1. 用 dH2O 清洗切片 3 次,每次 5 分钟。
    2. 将切片在 3% 过氧化氢中孵育 10 分钟。
    3. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    4. 在洗涤缓冲液中洗涤切片 5 分钟。
    5. 用 100–400 µl 封闭液在室温下封闭每个切片 1 小时。
    6. 除去封闭液,并向每个切片中添加 100–400 µl 一抗稀释液。 4°C 孵育过夜。
    7. 去除抗体溶液,用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次,每次 5 分钟。
    8. 用 1-3 滴所需的 HRPA 覆盖切片。 在加湿室中室温孵育 30 分钟。
    9. 用洗涤缓冲液洗涤切片 3 次,每次 5 分钟。
    10. 使用前将 DAB 显色剂浓缩液加入 DAB 稀释液中并充分混合。
    11. 在每个切片上涂抹 100–400 µl DAB 并密切监测。 1-10 分钟通常可提供可接受的染色强度。
    12. 将载玻片浸入 dH2O 中。
    13. 如果需要,用苏木精复染切片。
    14. 用 dH2O 清洗切片两次,每次 5 分钟。
    15. 切片脱水:95%乙醇孵育切片两次,每次 10 秒; 在 100% 乙醇中重复,孵育切片两次,每次 10 秒; 在二甲苯中重复,孵育切片两次,每次 10 秒。
    16. 用盖玻片和封固剂封固切片。
     

    Datasheet & SDS

    生物描述

    特异性

    RNA polymerase II CTD repeat YSPTSPS (phospho S5) Mouse mAb可检测RNA polymerase II CTD repeat YSPTSPS (phospho S5)蛋白的内源水平。

    别名
    Phospho RNA polymerase II CTD repeat YSPTSPS (Ser 5)
    Uniprot ID
    P24928
    克隆号
    F13E6
    背景

    真核生物拥有三种核 DNA 依赖性 RNA 聚合酶 (RNAP):RNAP I、RNAP II 和 RNAP III。 RNAP II 负责合成 mRNA 和许多非编码 RNA (ncRNA),由 12 种多肽组成。 最大的亚基 Rpb1 具有酶的催化活性和由串联七肽重复序列(共有 Tyr1-Ser2-Pro3-Thr4-Ser5-Pro6-Ser7)组成的独特 C 末端结构域 (CTD)。 重复次数因物种而异。 CTD 在转录与 RNA 加工耦合中发挥作用,并影响转录延伸和终止。 翻译后修饰,特别是磷酸化,在转录过程中调节其活性。 CTD 对转录过程的所有阶段都有显着贡献,包括增强或调节成熟 RNA 合成所需的 RNA 加工反应的效率。 其磷酸化状态关键决定其活性。

    参考文献

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