ApoA5 Antibody [H10J23]

目录号: F9446

抗体应用：反应性：Human

Lane 1: HepG2, Lane 2: Human plasma

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:50

抗体应用
WB, IP

反应性
Human

抗体类型
Mouse Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
41 kDa

阳性对照	Hep G2 cell; Human plasma
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
ApoA5 Antibody [H10J23] 可检测内源性 ApoA5 总蛋白水平。

蛋白定位
乳糜微粒，内体，高尔基体，高密度脂蛋白，细胞外环境，极低密度脂蛋白

Uniprot ID
Q6Q788

克隆号
H10J23

别名
Apolipoprotein A-V; Apo-AV; ApoA-V; Apolipoprotein A5; Regeneration-associated protein 3; APOA5; RAP3

背景
载脂蛋白A5（ApoA5，也称载脂蛋白AV）是一种疏水性两亲性蛋白质，由343个氨基酸组成，属于载脂蛋白基因家族（APOA1/C3/A4簇），是血浆甘油三酯水平的关键调节因子，尤其对富含甘油三酯的脂蛋白（如乳糜微粒和极低密度脂蛋白）起着重要作用。ApoA5具有N端水溶性螺旋束（氨基酸残基1-146）、C端脂质结合域（氨基酸残基295-343）和蛋白聚糖结合位点（氨基酸残基186-227），这些结构促进其与脂蛋白和内皮细胞的相互作用，其中卷曲螺旋结构域增强了其与脂滴和内皮细胞的结合。载脂蛋白A5 (ApoA5) 与富含甘油三酯的脂蛋白结合，并通过毛细血管内皮细胞上的GPIHBP1募集脂蛋白脂肪酶 (LPL)，稳定膜亚结构域中的脂解复合物，从而加速乳糜微粒和极低密度脂蛋白 (VLDL) 的脂解。此外，ApoA5 还通过其C端区域抑制ANGPTL3/8介导的LPL抑制作用。在肝细胞内，ApoA5靶向内质网定位的脂滴，调节肝脏甘油三酯的代谢，促进胞质脂滴的生成而非分泌，并影响脂蛋白的组装。APOA5的功能缺失突变或多态性会损害脂解和残余脂的清除，导致高甘油三酯血症和心血管风险增加。

背景

载脂蛋白A5（ApoA5，也称载脂蛋白AV）是一种疏水性两亲性蛋白质，由343个氨基酸组成，属于载脂蛋白基因家族（APOA1/C3/A4簇），是血浆甘油三酯水平的关键调节因子，尤其对富含甘油三酯的脂蛋白（如乳糜微粒和极低密度脂蛋白）起着重要作用。ApoA5具有N端水溶性螺旋束（氨基酸残基1-146）、C端脂质结合域（氨基酸残基295-343）和蛋白聚糖结合位点（氨基酸残基186-227），这些结构促进其与脂蛋白和内皮细胞的相互作用，其中卷曲螺旋结构域增强了其与脂滴和内皮细胞的结合。载脂蛋白A5 (ApoA5) 与富含甘油三酯的脂蛋白结合，并通过毛细血管内皮细胞上的GPIHBP1募集脂蛋白脂肪酶 (LPL)，稳定膜亚结构域中的脂解复合物，从而加速乳糜微粒和极低密度脂蛋白 (VLDL) 的脂解。此外，ApoA5 还通过其C端区域抑制ANGPTL3/8介导的LPL抑制作用。在肝细胞内，ApoA5靶向内质网定位的脂滴，调节肝脏甘油三酯的代谢，促进胞质脂滴的生成而非分泌，并影响脂蛋白的组装。APOA5的功能缺失突变或多态性会损害脂解和残余脂的清除，导致高甘油三酯血症和心血管风险增加。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23307945/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26028042/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%