Daxx Antibody [H1F20]

目录号: F4690

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat

Lane 1: K562, Lane 2: A20, Lane 3: PC12

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

WB
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：5%。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IF1:25

抗体应用
WB, IF

反应性
Human, Mouse, Rat

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
110 kDa

阳性对照	K562 cells; A20 cells; PC12 cells; HeLa cells
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

IF
实验步骤：样品准备 1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。 2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。 3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。 4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。固定 1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。 2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。通透 1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。） 2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。封闭添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。免疫荧光染色（第一天） 1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。 2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。免疫荧光染色（第二天） 1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。 2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。 3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。 4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光孵育 5~10 min。 5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。封片 1. 抗荧光淬灭封片剂封片。 2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。 3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。

实验步骤：

样品准备

1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。

2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。

3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。

4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。

固定

1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。

2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。

通透

1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。

（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。）

2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。

封闭

添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）

注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。

免疫荧光染色（第一天）

1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。

2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。

免疫荧光染色（第二天）

1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。

2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。

3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。

4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光孵育 5~10 min。

5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。

封片

1. 抗荧光淬灭封片剂封片。

2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。

3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Daxx Antibody [H1F20] 可检测内源性 Daxx 总蛋白水平。

蛋白定位
着丝粒，染色体，细胞质，细胞核

Uniprot ID
Q9UER7

克隆号
H1F20

别名
DAXX; Death domain-associated protein 6; Daxx (hDaxx); ETS1-associated protein 1 (EAP1); Fas death domain-associated protein; BING2; DAP6

背景
Daxx（死亡结构域相关蛋白）是一种普遍表达的核支架蛋白，最初被鉴定为Fas相互作用蛋白，主要定位于早幼粒细胞白血病核体（PML-NBs），对染色质重塑、转录调控和细胞凋亡调节至关重要；小鼠Daxx基因敲除会导致胚胎因发育过程中细胞凋亡过度而致死。Daxx包含一个N端螺旋束（4HB）结构域，该结构域介导与ATRX、p53和MDM2等蛋白的相互作用；一个中央H3.3/H4结合区，该区域与组蛋白二聚体折叠，作为H3.3特异性分子伴侣，将H3.3沉积在PML-NBs和端粒；以及多聚天冬氨酸/谷氨酸（polyD/E）基序，该基序可感知错误折叠的蛋白质并促进其重新折叠。 Daxx蛋白包含两个SUMO相互作用基序（SIMs），分别调控SUMO化修饰和PML-NB靶向；以及一个C端结构域，该结构域与Fas、CENP-C和DNA甲基转移酶结合。Daxx蛋白促进ATRX依赖的H3.3沉积，从而抑制异染色质并维持端粒长度；通过N端与TERT亚基（DKC1、GAR1、NHP2）的相互作用，在Cajal小体中组装端粒酶全酶，促进端粒酶靶向并防止端粒缩短；通过HDAC募集和PML-NB支架蛋白的构建抑制NF-κB和E2F-1靶基因的转录；通过Fas/JNK激活调节细胞凋亡，同时在发育过程中表现出抗凋亡作用；并通过结合错误折叠蛋白来维持蛋白质稳态，从而响应细胞应激。 Daxx蛋白的疾病相关突变会破坏其与蛋白伴侣的结合，例如损害H3.3/ATRX介导的沉积或通过N端损伤阻断端粒酶组装；同时，翻译后SUMO化修饰增强了PML靶向性，磷酸化调节了亚核定位，并与HIPK2和TGF-β通路相互作用，整合细胞周期调控和存活信号。Daxx蛋白的失调可通过H3.3扰乱促进癌基因表达，从而导致癌症；也可通过ATRX突变导致α-地中海贫血综合征；此外，由于蛋白质稳态失衡，还会导致神经退行性疾病。

背景

Daxx（死亡结构域相关蛋白）是一种普遍表达的核支架蛋白，最初被鉴定为Fas相互作用蛋白，主要定位于早幼粒细胞白血病核体（PML-NBs），对染色质重塑、转录调控和细胞凋亡调节至关重要；小鼠Daxx基因敲除会导致胚胎因发育过程中细胞凋亡过度而致死。Daxx包含一个N端螺旋束（4HB）结构域，该结构域介导与ATRX、p53和MDM2等蛋白的相互作用；一个中央H3.3/H4结合区，该区域与组蛋白二聚体折叠，作为H3.3特异性分子伴侣，将H3.3沉积在PML-NBs和端粒；以及多聚天冬氨酸/谷氨酸（polyD/E）基序，该基序可感知错误折叠的蛋白质并促进其重新折叠。 Daxx蛋白包含两个SUMO相互作用基序（SIMs），分别调控SUMO化修饰和PML-NB靶向；以及一个C端结构域，该结构域与Fas、CENP-C和DNA甲基转移酶结合。Daxx蛋白促进ATRX依赖的H3.3沉积，从而抑制异染色质并维持端粒长度；通过N端与TERT亚基（DKC1、GAR1、NHP2）的相互作用，在Cajal小体中组装端粒酶全酶，促进端粒酶靶向并防止端粒缩短；通过HDAC募集和PML-NB支架蛋白的构建抑制NF-κB和E2F-1靶基因的转录；通过Fas/JNK激活调节细胞凋亡，同时在发育过程中表现出抗凋亡作用；并通过结合错误折叠蛋白来维持蛋白质稳态，从而响应细胞应激。 Daxx蛋白的疾病相关突变会破坏其与蛋白伴侣的结合，例如损害H3.3/ATRX介导的沉积或通过N端损伤阻断端粒酶组装；同时，翻译后SUMO化修饰增强了PML靶向性，磷酸化调节了亚核定位，并与HIPK2和TGF-β通路相互作用，整合细胞周期调控和存活信号。Daxx蛋白的失调可通过H3.3扰乱促进癌基因表达，从而导致癌症；也可通过ATRX突变导致α-地中海贫血综合征；此外，由于蛋白质稳态失衡，还会导致神经退行性疾病。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37633949/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31350900/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%