Phospho-YAP (Ser397) Antibody [B23M8]

目录号: F0753

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat

Lane 1: HepG2, Lane 2: SW480, Lane 3: MDA-MB-435, Lane 4: MDA-MB-453

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:100

抗体应用
WB, IP

反应性
Human, Mouse, Rat

抗体类型
Rabbit Monoclonal Antibody

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
65 kDa-78 kDa

阳性对照	Hep G2 cells; MDA-MB-231 cell (treated with epinephrine (10 μM, 60 min) or Forskolin (10 μm, 60 min)); MDA-MB-453 cell; SW480 cell; F9 cell
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Phospho-YAP (Ser397) Antibody [B23M8] 仅识别 Ser397 处磷酸化的内源性 YAP 总蛋白水平。

蛋白定位
细胞连接，细胞膜，细胞质，内膜系统，细胞核，细胞紧密连接

Uniprot ID
P46937

克隆号
B23M8

别名
Hippo; P-YAP; S347; S381; Ser347; Ser381; YAP S381; Yorkie

背景
pYAP-Ser397（Ser397位点磷酸化 YAP）是 Yes 相关蛋白 (YAP) 的磷酸化形式，YAP 是 Hippo 信号通路中的关键转录共激活因子，负责调节细胞增殖、干细胞更新和组织生长。激酶 LATS1/2 对 S397 位点进行磷酸化，产生磷酸化降解决定子基序，该基序有利于 β-TrCP E3 泛素连接酶的识别，导致 YAP 在蛋白酶体中降解，从而抑制其转录活性。这种翻译后修饰在限制 YAP 的核定位和阻止 TEAD 介导的基因转录激活方面起着关键作用，而 TEAD 介导的基因转录促进了细胞周期进程、存活和致癌转化。相反，由磷酸酶（例如PP1A）介导的S397位点去磷酸化，可以稳定YAP并促进其在细胞核中积累，从而驱动促生长基因（例如Myc、细胞周期蛋白E和Rheb）的转录，尤其是在增殖的祖细胞中。值得注意的是，S397磷酸化不仅受LATS激酶调控，还通过LATS非依赖性通路（例如整合素α3/FAK/CDC42轴）调控，该通路调节PP1A活性以促进YAP-S397去磷酸化。因此，pYAP-S397充当平衡YAP稳定性和定位的分子开关，其调控对于维持组织稳态、支持干细胞动力学以及防止过度增殖或肿瘤形成至关重要。

背景

pYAP-Ser397（Ser397位点磷酸化 YAP）是 Yes 相关蛋白 (YAP) 的磷酸化形式，YAP 是 Hippo 信号通路中的关键转录共激活因子，负责调节细胞增殖、干细胞更新和组织生长。激酶 LATS1/2 对 S397 位点进行磷酸化，产生磷酸化降解决定子基序，该基序有利于 β-TrCP E3 泛素连接酶的识别，导致 YAP 在蛋白酶体中降解，从而抑制其转录活性。这种翻译后修饰在限制 YAP 的核定位和阻止 TEAD 介导的基因转录激活方面起着关键作用，而 TEAD 介导的基因转录促进了细胞周期进程、存活和致癌转化。相反，由磷酸酶（例如PP1A）介导的S397位点去磷酸化，可以稳定YAP并促进其在细胞核中积累，从而驱动促生长基因（例如Myc、细胞周期蛋白E和Rheb）的转录，尤其是在增殖的祖细胞中。值得注意的是，S397磷酸化不仅受LATS激酶调控，还通过LATS非依赖性通路（例如整合素α3/FAK/CDC42轴）调控，该通路调节PP1A活性以促进YAP-S397去磷酸化。因此，pYAP-S397充当平衡YAP稳定性和定位的分子开关，其调控对于维持组织稳态、支持干细胞动力学以及防止过度增殖或肿瘤形成至关重要。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28457749/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27979972/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%