Mouse CD45R+ Cell lsolation Kit

目录号: Q0008

    本试剂盒需要分选柱

    Mouse CD45R+ cells were sorted from Splenocytes (C57BL/6) using the Mouse CD45R+ Cell Isolation Kit (Q0008). Cells before and after sorting were stained with APC Human/Mouse CD45R/B220 Antibody [RA3-6B2] (G0108) followed by FCM analysis. The results showed that the purity of Mouse CD45R+ B cells increased from 71.98% (pre-sorting) to 99.37% (post-sorting).

    产品描述

    产品介绍:
    小鼠CD45R细胞分选试剂盒阳性分选或去除来自骨髓、淋巴结、脾脏等淋巴组织,或肠固有层、腹膜腔、肺等非淋巴组织的小鼠B细胞。
     
    应用范围:
    ● 从小鼠淋巴结和腹膜腔分离B细胞以研究细胞因子表达和抗原呈递活性,或从脾脏分离以研究轻链基因重排和B细胞增殖。
    ● 结合CD90(Thy1.2)、CD4(L3T4)和CD8(Ly-2)分离未接触的巨噬细胞。
    ● 分离小鼠B细胞用于过继转移实验,以研究利什曼病小鼠模型。
     
    组分:
    CD45R微珠,鼠源:CD45R抗体和微珠通过共价偶联结合,分散在含有稳定剂和0.05%叠氮化钠的缓冲溶液中。
     
    储存条件:
    -20℃避光保存,避免反复冻融。
     
    分选柱:
    阳性分选:MS, LS, XS Columns
    清除分选:LD, D Columns
     
    背景信息:
    CD45R抗原在B细胞系细胞的整个发育过程中均有表达,从早期祖B细胞阶段开始,并在终末分化为浆细胞时下调。CD45R也表达于浆细胞样树突状细胞。

    实验步骤

    实验前准备

    缓冲液配制: PBS缓冲液(pH 7.2)包括0.5%的BSA和2 mM EDTA,需预先通过0.22 μm滤膜过滤除菌。


     
    实验步骤

    1. 样本准备:
    以小鼠脾脏为例:
    a. 在70 μm细胞筛网上研磨脾脏,以预冷的 PBS 冲洗细胞筛网,收集细胞悬液于50 ml 离心管中,500 g,离心5 min。
    b. 离心完成后,弃上清,加入5 ml ACK 红细胞裂解液,室温裂解5 min,再加入20 ml PBS,500 g,离心5 min。
    注意:红细胞裂解步骤可根据所用裂解液不同调整用量及时间。少量红细胞残留不会影响后续分选及细胞纯度。
    c. 离心完成后,弃上清,将脾细胞重悬于PBS,细胞悬液用70 μm细胞筛网过滤后,计数。计数完成后,继续以500 g,离心5 min。
    d. 离心完成后,弃上清,将细胞重悬于分选 buffer 中,调整细胞密度为1×108 cells/ml。
    2. CD45R微珠标记:每107细胞中加入 10 µL CD45R微珠,混匀后 4 ℃孵育15 min,每隔5 min轻弹混匀,避免细胞聚集。
    注意:分选更多细胞时,按比例增加CD45R微珠用量(如分选5×107细胞,需在500 μL细胞悬液中加入50 μL CD45R微珠)。
    3. 洗涤细胞:孵育完成后,加入1 mL分选buffer(避免剧烈振荡或上下颠倒混匀)。300 g离心3 min,弃上清,加入1 mL分选buffer重悬细胞。
    4. 磁珠分选:
    将分选柱置于MACS分离器的磁场中,用缓冲液冲洗分选柱(MS柱: 500 μL;LS柱: 3 mL)。
    将细胞悬液加入分选柱,收集未标记的流经细胞(可选),再用分选液清洗分选柱(MS柱: 2×1 mL;LS柱: 2×3 mL)。
    5. 收集CD45R阳性细胞:移出分选柱,加入适量缓冲液,用柱塞快速冲洗,收集磁性标记的CD45R阳性细胞(MS柱: 2×1 mL;LS柱: 2×3 mL)。
    注意:每次液体完全流尽后再进行下一步操作。
    6.(可选)二次富集: 若需更高纯度,可重复步骤4-5,在第二个分选柱上再次富集CD45R阳性细胞。
    实验全程保持低温(4℃),动作迅速以减少细胞损伤。

    Datasheet & SDS

    技术支持

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