Anti-Integrin β 3 Rabbit Antibody [P12C15]

目录号: F3638

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:20 FCM1:20

抗体应用
WB, IP, FCM

反应性
Human, Mouse, Rat

抗体类型
Rabbit

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
87 kDa

阳性对照	U-87MG cell; HEL cell; HUVEC cell; C2C12 cell
阴性对照	LnCaP cell; HeLa cell; PC-3 cell; Raw264.7 cell

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Anti-Integrin β 3 Rabbit Antibody [P12C15] 可检测内源性 Integrin β 3 总蛋白水平。

蛋白定位
细胞连接，细胞膜，细胞突起，内膜系统，突触

Uniprot ID
P05106

克隆号
P12C15

别名
CD61, GP3A, ITGB3, Integrin beta-3, Platelet membrane glycoprotein IIIa, GPIIIa

背景
整合素β3是跨膜受体整合素家族的关键亚基，介导细胞粘附于细胞外基质(ECM)，并跨质膜双向传递信号。它通常与αV或αIIb亚基配对形成αVβ3和αIIbβ3整合素，这些整合素在血小板聚集(αIIbβ3)、血管生成、细胞迁移和存活(αVβ3)等多种生物学过程中发挥重要作用。整合素β3具有一个较大的胞外结构域，包括负责配体结合的βA（I样）结构域、一个混合结构域、一个丛蛋白-信号素-整合素(PSI)结构域以及多个I-EGF结构域，随后是一个跨膜区和一个与胞内蛋白相互作用的短胞质尾。跨膜结构域对于α/β异二聚化和信号传递至关重要。 β3整合素在非活性状态下呈弯曲构象，但在活化后会发生剧烈的构象变化，在I-EGF1/2“膝盖”处伸展，并发生混合结构域向外摆动，从而实现高亲和力配体结合和腿部分离。活化受由内向外信号传导的严格调控，其中踝蛋白和kindlin等蛋白质与胞质尾部结合，引发构象从低亲和力状态向高亲和力状态转变。由外向内信号传导在配体结合后进行，导致细胞骨架重排和基因表达调控。β3整合素还参与破骨细胞的骨吸收、免疫细胞运输和肿瘤进展。其活性受二价阳离子（Ca²⁺、Mg²⁺、Mn²⁺）、胞质残基的磷酸化以及与其他膜蛋白的相互作用调控。基因变异，例如PSI结构域中的Leu33Pro多态性，与免疫反应改变和血栓形成风险增加相关。β3整合素失调与血栓形成、癌症转移和炎症性疾病有关。

背景

整合素β3是跨膜受体整合素家族的关键亚基，介导细胞粘附于细胞外基质(ECM)，并跨质膜双向传递信号。它通常与αV或αIIb亚基配对形成αVβ3和αIIbβ3整合素，这些整合素在血小板聚集(αIIbβ3)、血管生成、细胞迁移和存活(αVβ3)等多种生物学过程中发挥重要作用。整合素β3具有一个较大的胞外结构域，包括负责配体结合的βA（I样）结构域、一个混合结构域、一个丛蛋白-信号素-整合素(PSI)结构域以及多个I-EGF结构域，随后是一个跨膜区和一个与胞内蛋白相互作用的短胞质尾。跨膜结构域对于α/β异二聚化和信号传递至关重要。 β3整合素在非活性状态下呈弯曲构象，但在活化后会发生剧烈的构象变化，在I-EGF1/2“膝盖”处伸展，并发生混合结构域向外摆动，从而实现高亲和力配体结合和腿部分离。活化受由内向外信号传导的严格调控，其中踝蛋白和kindlin等蛋白质与胞质尾部结合，引发构象从低亲和力状态向高亲和力状态转变。由外向内信号传导在配体结合后进行，导致细胞骨架重排和基因表达调控。β3整合素还参与破骨细胞的骨吸收、免疫细胞运输和肿瘤进展。其活性受二价阳离子（Ca²⁺、Mg²⁺、Mn²⁺）、胞质残基的磷酸化以及与其他膜蛋白的相互作用调控。基因变异，例如PSI结构域中的Leu33Pro多态性，与免疫反应改变和血栓形成风险增加相关。β3整合素失调与血栓形成、癌症转移和炎症性疾病有关。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30018079/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19704023/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%