Anti-Phospho-Synapsin-1 (Ser605) Rabbit Antibody [M6M7]

目录号: F1303

抗体应用：反应性：Human, Mouse, Rat

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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使用信息

稀释比例
WB1:1000

抗体应用
WB

反应性
Human, Mouse, Rat

抗体类型
Rabbit

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
75-90 kDa

阳性对照	Mouse brain; Rat brain
阴性对照	Mouse lung

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 150s 以上)

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail, 磷酸酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液（建议使用 5% BSA溶液）中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。 (建议曝光时长 150s 以上)

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Anti-Phospho-Synapsin-1 (Ser605) Rabbit Antibody [M6M7] 仅识别 Ser605 处（在大鼠中对应 Ser603）磷酸化的内源性 Synapsin-1 蛋白水平。

蛋白定位
细胞突起，胞质囊泡，高尔基体，突触

Uniprot ID
P17600

克隆号
M6M7

别名
Synapsin-1, Brain protein 4.1, Synapsin I, SYN1

背景
突触蛋白 I（蛋白 I）是一种主要的神经元特异性磷蛋白，也是 cAMP 依赖性和 Ca²⁺/钙调蛋白依赖性蛋白激酶的关键内源性底物。它广泛分布于中枢和周围神经系统的突触中，并特异性地与突触囊泡膜的胞质表面结合。突触蛋白家族由四个同源成员组成：突触蛋白 Ia 和 Ib（统称为突触蛋白 I）以及突触蛋白 IIa 和 IIb（统称为突触蛋白 II）。突触蛋白 I 和 II 合计约占突触囊泡蛋白总量的 9%。突触蛋白 I 和 II 主要存在于成熟突触中，而突触蛋白 III 主要在突触发育过程中表达，且表达水平相对较低。在功能上，突触蛋白 I 在调节神经递质释放方面起着关键作用。在神经元中，它有助于控制突触囊泡的胞吐功能。Ser-9 残基的磷酸化（磷酸化 Ser9 突触蛋白 I）会导致该蛋白与突触囊泡分离，而这是神经递质释放所必需的过程。此外，突触蛋白 I 通过影响突触前和突触后囊泡的释放来促进突触可塑性。从遗传学角度来看，突触蛋白 I 基因突变与 X 连锁癫痫伴不同程度学习障碍和行为障碍 (XELBD) 相关，这是一种以癫痫、认知障碍、大头畸形和攻击行为等不同组合为特征的神经系统疾病。Ser605 已被证实是突触蛋白 I 的主要磷酸化位点，体内证据也支持其重要性。丝氨酸 605 位点（与丝氨酸 568 位点同时）被 Ca²⁺/钙调蛋白依赖性蛋白激酶 II (CaMKII) 磷酸化，会破坏突触蛋白 I 捆绑肌动蛋白丝的能力。这可能是一种调节突触前细胞骨架动态组织的机制。

背景

突触蛋白 I（蛋白 I）是一种主要的神经元特异性磷蛋白，也是 cAMP 依赖性和 Ca²⁺/钙调蛋白依赖性蛋白激酶的关键内源性底物。它广泛分布于中枢和周围神经系统的突触中，并特异性地与突触囊泡膜的胞质表面结合。突触蛋白家族由四个同源成员组成：突触蛋白 Ia 和 Ib（统称为突触蛋白 I）以及突触蛋白 IIa 和 IIb（统称为突触蛋白 II）。突触蛋白 I 和 II 合计约占突触囊泡蛋白总量的 9%。突触蛋白 I 和 II 主要存在于成熟突触中，而突触蛋白 III 主要在突触发育过程中表达，且表达水平相对较低。在功能上，突触蛋白 I 在调节神经递质释放方面起着关键作用。在神经元中，它有助于控制突触囊泡的胞吐功能。Ser-9 残基的磷酸化（磷酸化 Ser9 突触蛋白 I）会导致该蛋白与突触囊泡分离，而这是神经递质释放所必需的过程。此外，突触蛋白 I 通过影响突触前和突触后囊泡的释放来促进突触可塑性。从遗传学角度来看，突触蛋白 I 基因突变与 X 连锁癫痫伴不同程度学习障碍和行为障碍 (XELBD) 相关，这是一种以癫痫、认知障碍、大头畸形和攻击行为等不同组合为特征的神经系统疾病。Ser605 已被证实是突触蛋白 I 的主要磷酸化位点，体内证据也支持其重要性。丝氨酸 605 位点（与丝氨酸 568 位点同时）被 Ca²⁺/钙调蛋白依赖性蛋白激酶 II (CaMKII) 磷酸化，会破坏突触蛋白 I 捆绑肌动蛋白丝的能力。这可能是一种调节突触前细胞骨架动态组织的机制。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8430330/ https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8702879/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%