Anti-RIG-I / DDX58 Rabbit Antibody [H1P18]

目录号: F3340

抗体应用：反应性：Mouse

Lane 1: RAW264.7, Lane 2: Mouse spleen, Lane 3: Mouse pancreas

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
400-668-6834 info@selleck.cn

操作要点

WB
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：5%。

使用信息

稀释比例
WB1:1000 IP1:30 IF1:500

抗体应用
WB, IP, IF

反应性
Mouse

抗体类型
Rabbit

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3

储存条件(自收到货起)
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
102 kDa, 80 kDa

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声破碎，冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭 1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆或置于冰上超声裂解样品，静置30 min。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 将细胞转移至EP管中。用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），超声破碎，冰上静置裂解 30 min。冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：5 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。

（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭

1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Anti-RIG-I / DDX58 Rabbit Antibody [H1P18] 用于检测内源性 RIG-I / DDX58 总的蛋白水平。

蛋白定位
细胞连接，细胞膜，细胞突起，细胞质，细胞骨架，内膜系统

克隆号
H1P18

别名
Rig-I,RIG-I/DDX58

背景
RIG-I（视黄酸诱导基因I），由DDX58基因编码，是一种细胞质模式识别受体（PRR），对于检测病毒RNA和触发抗病毒的先天免疫反应至关重要。RIG-I由两个N端半胱天冬酶激活和招募结构域（CARDs）、一个具有ATP酶活性的中心解旋酶核心（Hel1和Hel2结构域），以及一个C端结构域（CTD）组成，后者结合病毒RNA特征，如5′-三磷酸（5′-ppp）或5′-二磷酸（5′-pp）末端和短双链RNA（dsRNA）。RIG-I通过宿主RNA修饰，如2′-O-甲基化，区分病毒RNA与自体RNA，这些修饰阻止自体识别。病毒RNA结合后，RIG-I发生构象变化，暴露其CARDs，与TRIM25相互作用，后者通过泛素化修饰RIG-I，并与MAVS相互作用，激活TBK1/IKKε激酶，从而激活IRF3/7和NF-κB，促使产生I型干扰素（IFNs）和促炎细胞因子。解旋酶结构域的ATP水解对于RNA解旋和RIG-I的寡聚化至关重要，推动MAVS聚集，从而增强信号传导。此外，RIG-I还检测来自RNA聚合酶III的DNA衍生RNA中间体，扩展其在DNA病毒检测中的作用。RIG-I的活性通过翻译后修饰如磷酸化（如PKC-α/β）和乙酰化（如K909位点）调节，这些修饰抑制其功能，直到去磷酸化或HDAC6介导的去乙酰化恢复活性。由于突变（如DDX58移码突变）或异常circRIG-I的产生，RIG-I的功能失调可能导致Singleton-Merten综合症和与炎症相关的癌症等疾病。

背景

RIG-I（视黄酸诱导基因I），由DDX58基因编码，是一种细胞质模式识别受体（PRR），对于检测病毒RNA和触发抗病毒的先天免疫反应至关重要。RIG-I由两个N端半胱天冬酶激活和招募结构域（CARDs）、一个具有ATP酶活性的中心解旋酶核心（Hel1和Hel2结构域），以及一个C端结构域（CTD）组成，后者结合病毒RNA特征，如5′-三磷酸（5′-ppp）或5′-二磷酸（5′-pp）末端和短双链RNA（dsRNA）。RIG-I通过宿主RNA修饰，如2′-O-甲基化，区分病毒RNA与自体RNA，这些修饰阻止自体识别。病毒RNA结合后，RIG-I发生构象变化，暴露其CARDs，与TRIM25相互作用，后者通过泛素化修饰RIG-I，并与MAVS相互作用，激活TBK1/IKKε激酶，从而激活IRF3/7和NF-κB，促使产生I型干扰素（IFNs）和促炎细胞因子。解旋酶结构域的ATP水解对于RNA解旋和RIG-I的寡聚化至关重要，推动MAVS聚集，从而增强信号传导。此外，RIG-I还检测来自RNA聚合酶III的DNA衍生RNA中间体，扩展其在DNA病毒检测中的作用。RIG-I的活性通过翻译后修饰如磷酸化（如PKC-α/β）和乙酰化（如K909位点）调节，这些修饰抑制其功能，直到去磷酸化或HDAC6介导的去乙酰化恢复活性。由于突变（如DDX58移码突变）或异常circRIG-I的产生，RIG-I的功能失调可能导致Singleton-Merten综合症和与炎症相关的癌症等疾病。

参考文献
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32203325/

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%