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Lane 1: Hela
Lane 2: Jurkat
Lane 3: Ramos
操作要点
蛋白定位：细胞核。
WB
建议使用 RIPA/Nuclear Lysis Buffer 制备裂解物。
建议 SDS-PAGE 分离胶浓度：20%。
湿转参考条件：200 mA, 60 min，建议使用 0.22 μm PVDF膜。
使用信息
| 稀释比例 |
|---|
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| 抗体应用 |
|---|
| WB, IP, IF, FCM |
| 抗体类型 |
|---|
| Rabbit |
| 反应性 |
|---|
| Human |
| 储存液配方 |
|---|
| PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃ |
| 储存条件(自收到货起) |
|---|
| -20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
| 预测分子量 |
|---|
| 13 KDa |
| 阳性对照 | HeLa; Jurkat; Ramos |
|---|---|
| 阴性对照 |
样品处理数据示例
| 样品 | 处理情况 |
| MOLT-4 | Low expression |
| 点击查看更多样品数据 | |
*该蛋白在不同的人源细胞、组织内的表达量预测请参考：http://www.proteinatlas.org
实验方法
| WB |
|---|
实验步骤： 样品制备
1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/Nuclear Lysis Buffer （含蛋白酶抑制剂Cocktail），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；
5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；
6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。
电泳分离
1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：20 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）
转膜
1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；
2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；
3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上。（推荐采用 0.22 µm PVDF 膜） PVDF 膜孔径规格选择参照表 湿转法参考条件：200 mA, 60 min。
（注意电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）
封闭
1. 电转移后，室温下用 TBST 洗膜 5 min；
2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；
3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
抗体孵育 1. 用 一抗稀释液配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；
3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；
4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。
显色
1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；
2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。
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| IF |
|---|
实验步骤：
样品准备
1. 贴壁细胞：取洁净无菌盖玻片置于培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片。
2. 悬浮细胞：将细胞接种至多聚赖氨酸包被的洁净无菌载玻片上。
3. 冰冻切片：将玻片置于室温下解冻，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。
4. 石蜡切片：先将玻片脱蜡至水，纯水或 PBS 摇洗 3次，每次 3 min。然后进行抗原修复。
固定
1. 使用固定液，如4%多聚甲醛（4% PFA）室温固定细胞爬片/涂片或组织切片 10~15 min。
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
通透
1. 对样品添加去垢剂，如 0.1~0.3% Triton X-100，室温通透 10~20 min。
（仅针对胞内抗原，若是细胞膜上表达的抗原则可省略该步骤。）
2. 使用 PBS 摇洗样品 3次，每次 3 min。
封闭
添加封闭液，在室温下封闭至少 1 h。（常用的封闭液包括：与二抗同一来源的血清、BSA或山羊血清。）
注意事项：从封闭开始之后的所有步骤务必保证样品湿润，避免干燥，否则极易产生高背景。
免疫荧光染色（第一天）
1. 吸走封闭液，滴加稀释后的一抗。
2. 湿盒中 4°C 孵育过夜。
免疫荧光染色（第二天）
1. 吸走一抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
2. 滴加稀释后的荧光二抗，避光 4°C 孵育 1~2 h。
3. 吸走二抗，PBST 摇洗 3 次，每次 5 min。
4. 滴加稀释后的 DAPI，室温避光 孵育 5~10 min。
5. PBST 中摇洗 3 次，每次 5 分钟。
封片
1. 抗荧光淬灭封片剂封片。
2. 干燥玻片，将玻片置于室温下避光过夜。
3. 将载玻片放入玻片盒中 4°C 避光保存。
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生物描述
| 特异性 |
|---|
ID3 Rabbit mAb 检测内源性 ID3 总的蛋白水平。 |
| Uniprot ID |
|---|
| Q02535 |
| 克隆号 |
|---|
| J14L22 |
| 背景 |
|---|
ID3（DNA 结合抑制因子 3）是螺旋-环-螺旋 (HLH) 转录因子家族的成员，在调控分化、增殖和 DNA 损伤反应 (DDR) 等关键细胞过程中起着核心作用。与其他 HLH 蛋白不同，ID3 缺乏基本的 DNA 结合域，而是通过结合和隔离 E 蛋白（促进细胞分化的转录因子）来发挥作用。这种相互作用可防止 E 蛋白激活与分化相关的基因，从而维持祖细胞或未分化状态。ID3 的结构包含一个基本的 HLH 结构域，该结构域对于蛋白质-蛋白质相互作用至关重要，但对于直接 DNA 结合并不重要。 DNA 损伤后，ID3 在丝氨酸 65 位点被 ATM（毛细血管扩张性共济失调突变）激酶（DDR 的关键调控因子）磷酸化。这种磷酸化事件对于增强其与参与 DNA 修复的蛋白质的相互作用至关重要，特别是那些参与修复双链断裂 (DSB) 的蛋白质，例如 MRN 复合物 (NBS1、RAD50、MRE11)、MDC1 和 RECQL。这些相互作用对于通过同源重组 (HR) 促进修复至关重要，其中 ID3 促进关键修复酶（例如 RAD51）的募集，并促进 DNA 末端切除。它还有助于转录调控，通过与转录因子（如 E2F1）和染色质重塑因子（如 PRMT5）相互作用，影响 DNA 修复基因（例如参与 HR 和范康尼贫血 (FA) 通路的基因）的表达。 ID3 缺失会导致 DNA 修复受损，对 DNA 损伤因子（包括电离辐射和顺铂等化疗药物）的敏感性增加。ID3 在癌症生物学中具有双重作用，根据具体情况，它可以同时充当肿瘤抑制因子和促进因子。在某些癌症中，例如血液系统恶性肿瘤和结直肠癌，ID3 促进癌症干细胞自我更新和化学抗性，而在其他癌症中，它通过促进分化和防止不受控制的细胞增殖来抑制肿瘤进展。 |
| 参考文献 |
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