Microcephalin-1/BRIT1 Rabbit mAb

目录号: F1443

Filter:

Lane 1: Hela
Lane 2: Caki
Lane 3: COS-7
Lane 4: C6
Lane 5: NIH/3T3
Immunohistochemical analysis of formalin fixed paraffin embedded human Colorectal cancer tissue with F1443 at 1/100 dilution.

规格	价格	库存
20uL	790	现货
50uL	1240	现货
100uL	1990	现货
100uL*2	3790	现货
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操作要点

蛋白定位：细胞质; 细胞骨架。
WB
建议使用 RIPA/NP-40 Lysis Buffer 制备裂解物。

使用信息

稀释比例
WB1:1000

抗体应用
WB

抗体类型
Rabbit

反应性
Human, Mouse, Rat, Monkey

储存液配方
PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN₃

储存条件(自收到货起)
–20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years

预测分子量
100 kDa

阳性对照	Hela; Caki; COS-7; C6; NIH/3T3
阴性对照

实验方法

WB
实验步骤：样品制备 1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。 2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。 4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液； 5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度； 6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。电泳分离 1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表 2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）转膜 1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中； 2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗； 3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好； 4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）封闭（可选） 1. 电转移后，室温下用 TBS 洗膜 5 min； 2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温； 3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。抗体孵育 1. 用 5% 的脱脂奶粉来配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜； 2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min； 3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h； 4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。显色 1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀； 2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

实验步骤：

样品制备

1. 组织样品：破碎组织，加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），低温匀浆。

2. 贴壁细胞样品：吸去培养基, 用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

3. 悬浮细胞样品：将培养基转移至离心管中离心，弃上清，用冰冷的 PBS 清洗细胞 2 遍。加入适量冰冷的 RIPA/NP-40 Lysis Buffer （含PMSF），冰上静置裂解 5 min。

4. 将所得匀浆液/裂解液置于离心机中 4°C 离心 15 min，收集上清液；

5. 取少量裂解液测定蛋白质浓度；

6. 加入蛋白上样缓冲液，将 20 µL样品在 95~100°C加热 5 min，冰上静置冷却后离心 5 min。

电泳分离

1. 根据所提蛋白的浓度，将适量蛋白样品和 Marker 上样至 SDS-PAGE 凝胶。建议分离胶（即下层胶）浓度：10 %。 SDS-PAGE 分离胶浓度选择参照表

2. 电源调 80 V, 30 min。然后电源调 110 V~150 V，观察 Marker，待蛋白所在的预染蛋白 Marker 指示带得到合适的分离后，即可停止电泳。（注意电泳时电流切勿过大，如超过 150 mA 会导致温度上升，容易影响跑胶结果。如无法避免采用大电流，可对电泳槽使用冰浴降温。）

转膜

1.拿出电转槽，把夹子和耗材浸泡在预冷电转液中；

2.用甲醇活化 PVDF 膜 1 min，用转移缓冲液冲洗；

3.按照“夹子黑边-海绵-滤纸-滤纸-胶-PVDF膜-滤纸-滤纸-海绵-夹子白边”的顺序安装好；

4.将蛋白电转移至 PVDF膜上（推荐采用 0.45 µm PVDF 膜）。 PVDF 膜孔径规格选择参照表

湿转法参考条件：200 mA, 120 min。（电转条件可根据蛋白大小适当调节，分子量大的蛋白适宜采用大电流，并延长转膜时间，但需要确保电转槽始终处于低温的环境中，避免凝胶融化。）

封闭（可选）

1. 电转移后，室温下用 TBS 洗膜 5 min；

2. 在封闭液中将膜孵育 1 h，室温；

3. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

抗体孵育

1. 用 5% 的脱脂奶粉来配制一抗工作液（建议一抗稀释比 1:1000），4°C 条件下与膜轻柔摇晃孵育过夜；

2. 用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min；

3. 在封闭液中加入二抗，室温条件下与膜轻柔摇晃孵育 1 h；

4. 孵育结束后，用 TBST 洗膜 3 次，每次 5 min。

显色

1. 加入配制好的 ECL 发光底物（或根据二抗选择其他显色基质）混合均匀；

2. 与膜孵育1 min，去除多余底物（需保持膜湿润），置于显影仪中进行曝光。

Datasheet & SDS

生物描述

特异性
Microcephalin-1/BRIT1 Rabbit mAb检测内源性Microcephalin-1/BRIT1总蛋白水平。

Uniprot ID
Q8NEM0

克隆号
N5J16

背景
小头蛋白 1 (BRIT1) 是一种关键的 DNA 损伤反应和修复蛋白，在人类原发性小头畸形中发生突变。它通过调节 BRCA1 和 BRCA2 等 DNA 修复蛋白的募集并在 DNA 损伤后启动 ATM 和 ATR 信号通路，充当 DNA 修复的早期介质。BRIT1 是六种关键的 DNA 损伤反应和修复蛋白之一，其他六种蛋白为 ATM、CHEK2、BRCA1、RAD51 和 PARP-1。在正常组织细胞中，BRIT1 主要位于细胞核中，在那里它协调修复蛋白的募集并触发 ATM/ATR 损伤反应信号级联。 BRIT1 在细胞质中表达较高、核中表达较低与肿瘤分级较高和 ER 阴性状态相关，而在 BRCA2 肿瘤中则观察到 CHEK2 在细胞质中表达较低、BRIT1 在细胞质中表达较高。BRIT1 与其他 DNA 修复蛋白（53BP1、MDC1、NBS1、ATM、RPA 和 ATR）共定位，并且对于它们的激活至关重要。它可能通过染色质重塑来调节 DNA 修复以应对 DNA 损伤，从而促进修复蛋白进入 DNA。

背景

小头蛋白 1 (BRIT1) 是一种关键的 DNA 损伤反应和修复蛋白，在人类原发性小头畸形中发生突变。它通过调节 BRCA1 和 BRCA2 等 DNA 修复蛋白的募集并在 DNA 损伤后启动 ATM 和 ATR 信号通路，充当 DNA 修复的早期介质。BRIT1 是六种关键的 DNA 损伤反应和修复蛋白之一，其他六种蛋白为 ATM、CHEK2、BRCA1、RAD51 和 PARP-1。在正常组织细胞中，BRIT1 主要位于细胞核中，在那里它协调修复蛋白的募集并触发 ATM/ATR 损伤反应信号级联。 BRIT1 在细胞质中表达较高、核中表达较低与肿瘤分级较高和 ER 阴性状态相关，而在 BRCA2 肿瘤中则观察到 CHEK2 在细胞质中表达较低、BRIT1 在细胞质中表达较高。BRIT1 与其他 DNA 修复蛋白（53BP1、MDC1、NBS1、ATM、RPA 和 ATR）共定位，并且对于它们的激活至关重要。它可能通过染色质重塑来调节 DNA 修复以应对 DNA 损伤，从而促进修复蛋白进入 DNA。

参考文献
[1] Zhu X, et al. J Breast Cancer. 2018 Sep;21(3):297-305. [2] Peng G, et al. Nat Cell Biol. 2009 Jul;11(7):865-72.

PVDF膜孔径规格选择参照表

Protein Size (kDa)	PVDF Transfer Membrane Pore Size (μm)
< 10	0.22
10-20	0.22
20-30	0.45
30-45	0.45
45-70	0.45
80-100	0.45
100-140	0.45
> 140	0.45

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* 必填项

Protein Size (kDa)	Separating Gel Percentage
4-40	20%
12-45	15%
10-70	12.5%
15-100	10%
25-100	8%
60-210	5%